(10分)实验是生命科学十分重要的发现和论证方法，实验方法的正确与否，直接影响到实验的结果和结论。请根据题意回答有关实验问题。(1)在“观察植物细胞有丝分裂”实验中，甲、乙、丙三位同学取洋葱根尖后进行了如下操作。(表中“+”表示该步骤正常操作，“—”表示该步骤未操作)学 生步骤解 离漂 洗染 色压 片镜检甲+—+++乙—++++丙+++++观察其中一个装片，发现根尖各细胞中染色体未着上颜色或着色很浅，无法看清，这个装片最可能由____同学制作。染色体染色不理想的主要原因是____。实验过程中解离的目的是____，其中用到盐酸，盐酸在＂观察细胞中DNA和RNA的分布＂中也有用到，其作用是____。(2)下图为人工培养的肝细胞中DNA含量随时间变化的曲线，由图分析该细胞的一个细胞周期为____小时，请根据此图在答题纸上绘出在一个细胞周期中每条染色体上的DNA分子随时间的关系坐标图。(3)用新鲜的菠菜为材料提取叶绿体的色素，但得到的色素滤液的颜色较浅。可能的原因有（写两条）____。-乐乐题库
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(10分)实验是生命科学十分重要的发现和论证方法，实验方法的正确与否，直接影响到实验的结果和结论。请根据题意回答有关实验问题。(1)在“观察植物细胞有丝分裂”实验中，甲、乙、丙三位同学取洋葱根尖后进行了如下操作。(表中“+”表示该步骤正常操作，“—”表示该步骤未操作)学 生步&&&&&&&&骤解 离漂 洗染 色压 片镜检甲+—+++乙—++++丙+++++观察其中一个装片，发现根尖各细胞中染色体未着上颜色或着色很浅，无法看清，这个装片最可能由&&&&同学制作。染色体染色不理想的主要原因是&&&&。实验过程中解离的目的是&&&&&，其中用到盐酸，盐酸在＂观察细胞中DNA和RNA的分布＂中也有用到，其作用是&&&&&。(2)下图为人工培养的肝细胞中DNA含量随时间变化的曲线，由图分析该细胞的一个细胞周期为&&&&小时，请根据此图在答题纸上绘出在一个细胞周期中每条染色体上的DNA分子随时间的关系坐标图。(3)用新鲜的菠菜为材料提取叶绿体的色素，但得到的色素滤液的颜色较浅。可能的原因有（写两条）&&&&。甲&&&没有漂洗去根尖中残留的解离液成分&&&使组织细胞相互分离开&&&改变细胞膜的通透性，加速染色剂进入细胞，同时使DNA与蛋白质分离，有利于DNA与染色剂结合&
本题难度：一般
题型：解答题&|&来源：2013-江西省南昌二中高三上学期第二次月考生物试卷
分析与解答
习题“(10分)实验是生命科学十分重要的发现和论证方法，实验方法的正确与否，直接影响到实验的结果和结论。请根据题意回答有关实验问题。(1)在“观察植物细胞有丝分裂”实验中，甲、乙、丙三位同学取洋葱根尖后进行了如下操作...”的分析与解答如下所示：
（1）在“观察植物细胞有丝分裂”实验中，若没有漂洗去根尖中残留的解离液成分，将会使根尖各细胞中染色体未着上颜色或着色很浅，无法看清。在该实验中解离的目的是使组织细胞相互分离开。盐酸在＂观察细胞中DNA和RNA的分布＂中的作用是改变细胞膜的通透性，加速染色剂进入细胞，同时使DNA与蛋白质分离，有利于DNA与染色剂结合。（2）由图分析可知，该细胞的一个细胞周期时间为从A到E的时间，为20小时。细胞中DNA含量的变化是，间期复制加倍，前、中、后期不变，末期一分为二，恢复原先水平。（3）在叶绿体中的色素提取实验中，若未加二氧化硅，研磨不充分或加入的丙酮或乙醇量过多，将会使色素滤液的颜色较浅。
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(10分)实验是生命科学十分重要的发现和论证方法，实验方法的正确与否，直接影响到实验的结果和结论。请根据题意回答有关实验问题。(1)在“观察植物细胞有丝分裂”实验中，甲、乙、丙三位同学取洋葱根尖后进行...
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等考点的理解。
因为篇幅有限，只列出部分考点，详细请访问。
实验与探究
与“(10分)实验是生命科学十分重要的发现和论证方法，实验方法的正确与否，直接影响到实验的结果和结论。请根据题意回答有关实验问题。(1)在“观察植物细胞有丝分裂”实验中，甲、乙、丙三位同学取洋葱根尖后进行了如下操作...”相似的题目：
下面列出了若干确定无机盐X是否是植物必需的实验方案，其中正确的设计是&&&&①以土壤为基质盆栽，浇缺少无机盐X的“完全培养液”②以沙土为基质盆栽，浇缺少无机盐X的“完全培养液”③只用缺少无机盐X的“完全培养液”，不用基质④以土壤为基质盆栽，浇蒸馏水⑤以沙土为基质盆栽，浇完全培养液⑥不用基质，只用完全培养液⑦不用基质，只用含无机盐X的培养液⑧不用基质，只用蒸馏水以③为实验组，⑥为对照组以④为实验组，①为对照组以②为实验组，⑤为对照组以⑦为实验组，⑧为对照组
使用高倍镜时，应先在低倍镜下把&&&&移到视野中央，然后转动&&&&，使高倍镜到位，再调节&&&&使物像清晰。使用显微镜观察玻片标本的实验结束后，首先应取下&&&&，然后将&&&&偏到两旁，再将&&&&下降到最低位置。&&&&
（甲）小明发现池水中有小白点在浮动，仔细看很久（乙）心想这是生物吗（丙）于是取一滴池水，做成玻片标本，用显微镜观看（丁）原来是草履虫。小明在探索生物的奥秘时，利用的科学方法的第一个步骤是&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&假说推论实验观察
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麻烦详解一下 谢谢_作业帮
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若将动物细胞培养在35P培养基中,则细胞周期中一个细胞的放射量的变化怎么样的?横坐标是细胞周期,纵坐标是放射量.
麻烦详解一下 谢谢
若将动物细胞培养在35P培养基中,则细胞周期中一个细胞的放射量的变化怎么样的?横坐标是细胞周期,纵坐标是放射量.& &麻烦详解一下&谢谢
B没错不过和楼上的解释有点出入：第一段上升阶段是细胞间期,细胞进行DNA的复制合成,于是培养基中的35P作为原料进入细胞,成为新合成的DNA分子中的磷元素.第二段持平是细胞分裂前期中期后期,染色质螺旋形成染色体,纺锤体形成,直到染色体被纺锤丝分别拉向细胞两极的过程中,细胞中DNA总量不变,可认为35P的含量是不变的.第三段陡降的瞬间是细胞分成了两个,每个细胞平均分得了原来细胞中一半的35P（当然这个是统计值,大量随机事件的平均结果而已）,于是细胞中35P的含量降到原来的一半.
B 由细胞分裂前期，细胞分裂期，再到细胞分裂间期可知是选B。
......能解释一下为什么前期是上升，分裂期持平，间期又下降了呢
那分裂前期DNA要复制啊！间期已经是分为2个细胞了！如图所示，横轴表示细胞周期，纵轴表示一个细胞核中DNA含量或染色体数目变化情况，据图分析，表示有丝分_百度知道
如图所示，横轴表示细胞周期，纵轴表示一个细胞核中DNA含量或染色体数目变化情况，据图分析，表示有丝分
com/zhidao/pic/item/adf40ad162d9ca3a，纵轴表示一个细胞核中DNA含量或染色体数目变化情况.baidu.&nbsp.hiphotos.jpg" />
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如图所示;&&/zhidao/wh%3D600%2C800/sign=742cb5abc55cc48221bf2b/adf40ad162d9ca3a://f、染色体数目变化的曲线依次是
<a href="http.jpg" esrc="http.hiphotos、染色体数目变化和减数分裂过程中DNA含量变化，横轴表示细胞周期
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坐标轴上就是指在x、y轴上吗？
提问者采纳
不包括象限？
帮我看道题吧。
题号二的。
只找到这几个。
思路：分情况讨论：1、AB=AC；2、AB=BC；3、AC=BC；第一种可以直接用圆规A为圆心，AB为半径画圆，交X、Y轴得C，共3个；第二种同第一种，也是3个；第三种做AB的中垂线，与X、Y轴交点，共2个；你的第一、二种情况各少一个点，第三种没有，希望你自己再想想
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太给力了，你的回答完美的解决了我的问题！
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出门在外也不愁FlowJo应用常见问题及其解答
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|个人分类:|系统分类:|关键词:FlowJo，问题，流式，数据分析，荧光补偿，周期，增殖，凋亡
FlowJo应用常见问题及其解答作者：蔡何青，FlowJo 技术专员Basic Analysis1.散点图中怎样调整坐标轴的范围（备注：只有FCS3.0格式的数据可以在散点图中调整坐标轴的范围。）点击坐标轴旁边的“T”按钮，选择“Change displayed parameter range”，在弹出的对话框中输入坐标轴范围的最小值和最大值。2. 直方图中怎样调整Y轴的范围在图形窗口中打开“option”选项，在“Y Axis”中选择“Auto”或者“Manual”，Auto：自动，软件能自动调整Y轴的范围，将整个直方图显示出来Manual：手动，需要在后面的“Max”选项中手动输入Y轴标度的最大值，然后按“回车键”确认。比如，在此例中需要将“Max”值设为160。备注：关于FlowJo调整坐标轴的详细内容请参考博文：3. 反向设门：怎样显示子细胞群在其祖先细胞群中的位置在布局页中右键单击某个细胞群的图，在弹出的下拉菜单中选择“Show Backgating”4. 输出图形时怎样自动对齐在布局页中选中需要对齐的多个图形，到布局页的“排齐”菜单中选择对齐的类型，常用的有：顶端对齐(Tops)、底部对齐(Bottoms)、左对齐(Lefts)、右对齐(Rights)5. 输出图片的格式有哪几种，哪种的分辨率最高可输出的图形格式有6种：PNG, JPG, GIF, SVG, EMF, PDF。其中，SVG为可缩放矢量图形，EMF格式可以在microsoftoffice里面进行编辑。在做图形输出的时候，如果是用作PPT的话，建议在FlowJo里面编辑完毕后再直接将完整的report输出到PPT，不建议在PPT里面做图形编辑。如果一定要在PPT做图形编辑的话，需将图片保存为EMF格式，这样可以在PPT2003版本里面做ungroup，进行单个编辑，不过图片插入PPT后，转变为PPT可识别的图，将会降低分辨率。如果是用作发表文章的话，建议将图片保存为PDF格式，再在专业的图片编辑器如Photoshop或者Illustrator里面进行编辑，再输出为杂志要求的文件格式，一般为JPG,现在也有杂志倾向于接收PDF图片。FlowJo默认的图形输出格式为PNG格式，如果需要更改，到“编辑”菜单栏里选择“偏好设置&文件格式”，在“布局编辑器”的输出格式类型中选择：6. 是否可以调整伪色图中每个点所表示的细胞个数，即调整点的数目，使其分辨率更高不可以调整。但是Dot Plot可以调整。(具体内容请参考博文：)7. 应用模板分析数据时，导入数据之后，布局编辑器里的图形批处理结果显示为“No Population”在这个例子中，在布局页中选择“Exp1”，然后点击“Batch”按钮，重新批处理一次，便可得到结果。8. Mean, Median, Mode, Geom.Mean的区别Mean：平均荧光强度Median：荧光强度的中位数Mode：众数，是一组数据中出现次数最多的数值Geometric mean：几何平均数，是指n个观察值连乘积的n次方根，计算公式为：在标准的高斯分布情况下，Median=mean=mode. 通常在流式中因为总会有异常值（超高或者超低值）的存在，不是完美的高斯分布，建议使用Median，降低异常值对数据的影响。9. 对于不同样本，目标细胞群所设的门的范围及位置不相同，是否影响可比性不影响。同一组实验中的不同样本，目标细胞群的位置和分布范围可能会有变化，在设门的时候，需要将目标细胞群都划在门内；而在分析数据的时候，是以统计学方法分析整个细胞群的分布情况，得到百分比以及平均荧光强度等数据。因此不会影响可比性。Compensation1.没有补偿对照单染管（单染样本或者单染Beads）是否可以用FlowJo调补偿不可以。不论是在仪器上调补偿，还是在软件比如FlowJo上调补偿，都必需在单染对照的基础上进行。2. 实际实验的时候，单染管没有明显的双峰分布，应该怎么调补偿如果没有明显的双峰分布，在设门界定阴性群和阳性群的时候：应使用区域门进行设门，阴性群和阳性群之间的距离要尽量远一些，阴性群不要包含极低值区域，阳性群不要包含极高值区域。如下图所示：关于用FlowJo做软件补偿请参考博文：3. 怎样才能确定FlowJo的补偿矩阵的准确度？依据单染对照的散点图还是实验样本的？依据单染对照进行判定。以一个两色实验为例（FL1::CD3-FITC 和 FL2::CD4-PE），在补偿之后，如果单染对照（比如FITC单染）中FITC阳性群和FITC阴性群的中位数（Median of FL2::CD4-PE）一致，说明补偿准确。详细内容请参考博文：4. 双指数转换中的3个参数分别表示什么Width Basis：宽度基底，为负值。在图形显示效果上反映了压缩的程度。在Logicle轴中，-10表示“-101~0段”以及“0~101段”以线性形式显示，-100表示“-102~0段”以及“0~102段”以线性形式显示，如下图：左图中Width Basis为-10，右图中为-100Extra negative decades：附加负十进位，即在坐标轴中增加的负数段的数目。“1”表示增加1个负十进位段，如下图：红色方框中的部分为在坐标轴上增加1个负十进位段Positive decades：正十进位，表示正十进位的数目。如下图所示：左图中Positive decades为4，表示有4个正十进位段：101~102、102~103、103~104、104~105。右图中Positive decades为7，表示有7个正十进位段：10-2~10-1、10-1~100、100~101、101~102、102~103、103~104、104~105。增大Positive Decades，能在二维图中以更大的空间显示低位段（0~101）的数据Cell Cycle1. RMS值位于哪个范围之内，周期分析结果可用FlowJo没有给出一个确定的RMS值范围来判断周期分析结果是否可用。RMS反映的是FlowJo拟合结果和实际数据的吻合程度，吻合得越好，RMS值越小。在进行周期分析的时候，如果数据比较好，FlowJo能自动拟合得到一个好的周期拟合结果，RMS值很小。如果数据不是很理想，需要不断更改限制条件，使RMS值更小，模型拟合得更好。RMS是对同一个数据的不同拟合情况进行比较的，数值越小则拟合越好，不能用来比较不同数据间拟合的好坏。2. CV值位于哪个范围之内，周期分析结果可用FlowJo没有给出一个确定的CV值范围来判断周期分析结果是否可用。周期实验中CV值的大小主要是由流式仪的灵敏度及DNA染色剂的特异性决定的。3.FlowJo拟合得到的CV值明显高于ModFitCV为变异系数，反映的是峰的宽度。ModFit在呈现数据的时候，是将荧光强度的范围归并为256个Channel，因此在分析任何数据的时候，其坐标轴的范围均为256。FlowJo则是呈现实际的荧光强度，坐标轴的范围依据具体数据的荧光强度来确定，大于256。因此FlowJo得到的CV值高于ModFit。下图中为同一个数据分别用ModFit和FlowJo进行分析得到的结果，左边为ModFit，右边为FlowJo。4.FlowJo的周期模块中怎么分析凋亡FlowJo的周期模块是专门用来分析细胞周期的，得到细胞周期各个时期的比例。分析细胞凋亡一般需要采用特定的方法，比如Annexin V-FITC/PI双标记法，用四分门设门方法来界定出凋亡细胞。具体内容请参考博文：5.FlowJo的周期模块中怎么分析异倍体FlowJo在分析细胞周期的时候，能够得到某一个细胞周期各个时期的比例。如果样本中包含有多个不同的倍体（比如同时含有二倍体以及异倍体），该样本中含有多个细胞周期，则需要借助其他的分析工具来分析。6. “创建门”之后，各个时期的比例发生变化创建门之前，计算细胞周期各个时期的比例是根据拟合方程计算出来的。左图为创建门之前的周期图，其中G1期与S期有相交部分，对于相交的部分，是根据方程计算出其属于G1期的可能性有多少，属于S期的可能性有多少，然后再计算出G1期细胞所占的总的比例。创建门之后，如右图，G1期、S期、G2期之间没有相交的部分，而是硬性地设了一个门，明确规定出G1期、S期和G2期的范围。因此，创建门之后，细胞周期各个时期的百分比会发生变化。如果周期分析的目的只是为了计算出细胞周期各个时期的比例，则不需要“创建门”。如果周期分析之后，需要界定出G1期、S期、G2期的细胞，并对某个时期比如G1期的细胞做进一步分析，则需要“创建门”界定出各个时期的细胞。更多关于周期分析的内容，请参考博文：Porliferation1 增殖分析发文章时采用哪个参数一般采用增殖指数（Proliferation &Index）和分裂指数（Division Index）2 增殖指数和分裂指数的定义及其区别和关系增殖指数（Proliferation &Index）：分裂次数的总和除以发生过增殖的亲代细胞数目分裂指数（Division Index）：分裂次数的总和除以增殖发生前的细胞总数3 为什么默认的增殖峰的最大值为8根据以往的研究结果，在CFSE法分析细胞增殖的实验中，可分辨出的最多的增殖峰的数目为8个
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