不同因素对动脉血压和尿液生成的影响 - 生理学 - 生物秀
标题: 不同因素对动脉血压和尿液生成的影响
摘要: 实验目的：复习哺乳类动物急性实验的常规操作，掌握动脉血压的直接测量法和输尿管插管技术。观察和分析某些重要的神经、体液因素对动脉血压和尿生成量的影响。实验原理：正常情况下，机体的动脉血压和尿液生成量
实验目的：
复习哺乳类动物急性实验的常规操作，掌握动脉血压的直接测量法和输尿管插管技术。观察和分析某些重要的神经、体液因素对动脉血压和尿生成量的影响。
实验原理：
正常情况下，机体的动脉血压和尿液生成量保持相对恒定。在内外环境发生变化时，神经、体液因素会相应的调节动脉血压和尿液生成量。
实验动物：家兔
实验器材和药品：PowerLab 8S主机，血压换能器，桥式放大器，计滴器，兔板，手术器械，注射器，手术照明灯，纱布，棉线，动脉夹，动脉插管，气管插管，输尿管插管，细塑料管，刺激保护电极，1% 戊巴比妥钠，生理盐水，1,250单位/ ml肝素，1:10,000去甲肾上腺素，20% 葡萄糖，速尿，垂体后叶素等。
实验步骤：
1. 动物准备：
⑴．家兔捕捉、称重和麻醉：以1%戊巴比妥钠溶液每公斤体重3 ml，从远离耳根部位的耳缘静脉中缓慢注射，麻醉家兔。注射时密切观察动物的呼吸、心跳、肌张力、角膜反射等，以防麻醉过深而死亡。麻醉后，家兔仰卧于兔板上，四肢和门牙用绳子固定。注意颈部必须放正拉直，以利于手术。
⑵．颈部剪毛、手术以及分离颈总动脉、神经和气管：在甲状软骨下缘沿正中线用手术刀切开皮肤，切口5~7 cm。用止血钳逐层分离皮下组织和肌肉，暴露气管。在气管两侧深层，找到颈总动脉鞘内的颈总动脉，颈总动脉鞘内还有三根神经，最粗的是迷走神经，其次是交感神经，减压神经最细。在打开颈总动脉鞘前先仔细分辨这三根神经。用玻璃分针分离迷走神经以及颈总动脉，用不同颜色的棉线穿线备用。迷走神经和颈总动脉分离约2~3 cm。注意不要过度牵拉和钳夹神经，以免神经受损。右侧颈总动脉分离约5 cm，下穿两根线，分别作为结扎和固定动脉插管用。分离气管，在气管下穿线备用。
⑶．气管插管：在气管靠近头端用剪刀剪一倒&T&字形的切口，插入气管插管，用线固定，保证家兔呼吸通畅，以防窒息。
⑷．动脉插管：插管前检查插管的开口处是否光滑，以防插入后戳破血管。在插管内灌注生理盐水，再注入1 ml左右1,250单位/ ml的肝素溶液，以防凝血。排净管内气泡。将右颈总动脉的远心端结扎（注意分支的甲状腺动脉，可两端结扎后剪断）。用动脉夹夹住颈总动脉的近心端，在结扎处和动脉夹之间，距离应在3 cm左右，便于插管。用锋利的眼科小剪刀在靠近远心端结扎处向下作一斜形切口，约为管径的一半。然后将动脉插管向心脏方向插入颈总动脉，用已穿好的棉线结扎，并缚紧固定于插管的侧管上。保持插管和动脉的方向一致，防止血管壁被插管刺破。打开动脉夹，即可见血液冲入动脉插管中。打开输液开关，血液的动脉压作用于血压换能器，即可记录血压的波动。
⑸．下腹部手术：剪去下腹部手术野的兔毛，剪下的兔毛应及时放入盛水的杯中浸湿，以免到处飞扬。在耻骨联合上缘沿正中线向上作5 cm长的皮肤切口，用止血钳逐层分离皮下组织和肌肉。沿腹白线切开，暴露腹腔，将膀胱轻轻向外向下拉出，暴露膀胱三角，仔细辨认输尿管，并将一侧输尿管与周围组织轻轻分离，避免出血。用棉线将输尿管近膀胱端结扎，在结扎线的上部用眼科小剪刀剪一斜口，切口约为管径一半，把充满生理盐水的细塑料管经输尿管的斜口向肾脏方向的输尿管插入，用线结扎固定，进行导尿，可看到尿液随着输尿管的蠕动间断性地从细塑料管中逐滴流出（注意：塑料管插入输尿管管腔内，不要插入管壁肌层与粘膜之间，插管方向应与输尿管方向一致，勿使输尿管扭曲，避免尿液流出不畅）。手术完毕后用浸润38℃左右生理盐水的纱布在腹部切口处遮盖，以保持腹腔内温度并避免体内水分的过度流失。将细塑料管引至兔板边缘，使尿液直接滴在记滴器的金属电极上。
2． 准备：
⑴．按照图3-38连接主机、桥式放大器、血压换能器和计滴器等设备。
⑵．启动计算机，打开PowerLab主机电源，在桌面上单击Chart4 for windows图标，进入Chart应用程序窗口。
⑶．用鼠标左键单击菜单栏的Setup，选取Channel settings选项，在通道设置对话框中对通道数目、名称、幅度范围进行设置（参见P38通道的设置）。把通道数设置为3，按OK钮保存设置并退出该对话框。屏幕上出现3个通道显示区。从第一通道开始依次显示尿滴数、动脉血压、刺激波。
⑷．选择采样速度为40K/s，显示比例为200:1。
⑸．各通道参数的设置：
* Channel 1显示区域显示尿滴的累积滴数。设置方法参见P40即时数据统计的设置。单击Channel 1的通道功能按钮▼，选取Computed Input&。Raw data input选择通道1，Function功能选项选取Counter，Range 设置为2 k，显示为连续记数（若超过范围，重新单击Start/Stop按钮开始记数）。
* Channel 2显示区域显示家兔的动脉血压。放大器参数设置参见P38放大器参数设置。Range 为10~50 mV， Low Pass为100 Hz。如果在Bridge Amplifier设置对话框左侧的信号显示窗口中看不到输入信号，可用鼠标左键单击右侧的zero按钮，系统自动调整输入信号的零位。单击Bridge Amplifier设置对话框下方的units按钮，进入Units Conversion(单位转换）对话框。单位转换的方法参见P39信号幅度范围的设置和单位的转换。
* Channel 3显示区域显示刺激方波。在刺激参数设置对话框下方的Stimulator Marker框中选取Channel 3。刺激设置方法参见P42刺激输出的设置。设置完毕后，单击菜单栏的setup，选取Stimulator Panel（刺激面板），弹出Stimulator Panel，在实验中可以方便地由刺激面板来设置刺激频率、幅度和波宽等参数。设置Mode为Pulse，单击Hz选项，Frequency 取50 Hz，Pulse Duration选0.1 ms。选中Continuous选项，表示连续的一定频率的刺激输出。Output Range为10 V ，Amplitude为1~5 V。刺激神经前先用刺激保护电极刺激家兔的颈部肌肉，以检查刺激输出是否有效。实验中如要对标本进行刺激，应先用鼠标左键单击开始/停止切换按钮，程序开始采样记录，然后单击刺激面板的On按钮，即可产生刺激输出，同时Channel 3（3通道）显示刺激方波。
⑹．在每个实验项目或加药时，单击加注工具条的Add按钮，打上标注，以利于实验结束后数据的统计和分析。加标注的方法参见P42记录过程中加上注解。
⑺．数据的测量和读取：以读取加药后一分钟的尿量为例，在采样结束后，将测量标记Ｍ▼移到加药起始处，然后移动鼠标直至右上角的时间读数为△=60 s处，读取Channel 1右侧的幅值读数，此读数即为加药后1 分钟的尿量。用同样的方法可读取加药后第2 分钟及第3 分钟内的尿量。测量方法参见P46实验数据的计算、分析和统计。
观察项目：
观察并同时记录正常动脉血压和尿量，方法参见P41实验数据的记录。每项实验开始时，都应先记录一分钟尿量作为对照，然后分别进行注射各种药品，观察和记录三分钟内尿量的变化（注意：记录注射药物后头三分钟内每分钟的尿量，而不是三分钟累计尿量）。
1． 从耳缘静脉迅速注射37℃的生理盐水20 ml，观察和记录动脉血压和每分钟尿量的变化。
2． 从耳缘静脉注射1 ：10,000去甲肾上腺素0.2~0.3 ml（现配），观察和记录动脉血压和每分钟尿量的变化。
3． 从耳缘静脉注射20％葡萄糖溶液5~10 ml，观察和记录动脉血压和每分钟尿量的变化。
4． 从耳缘静脉注射垂体后叶素2~4单位，观察和记录动脉血压和每分钟尿量的变化。
5． 从耳缘静脉注射速尿（5 mg/kg），观察和记录动脉血压和每分钟尿量的变化。
6． 结扎左侧迷走神经，靠近中枢端剪断，用刺激保护电极刺激左迷走神经的外周端（近心端）（50Hz，0.1ms，5V），观察和记录动脉血压和尿量的变化。
7． 从动脉插管的侧管放出20ml的血液，观察和记录动脉血压和每分钟尿量的变化。
8． 待各项实验步骤完成后，单击Start/Stop切换按钮停止记录。测量和读取各项实验步骤中的动脉血压值和尿量，测量方法参见P46实验数据的计算、分析和统计。
9．选取各实验步骤的波形，把所需的内容按先后顺序分别粘贴在时间轴的末尾。方法参见P45选取数据的剪切、复制和粘贴。
10．打印上述粘贴的实验结果。打印方法参见P49实验数据的打印。
注意事项：
1. 麻醉要适量，过浅，兔子挣扎；过深则反射不灵敏且容易引起家兔死亡。
2. 动脉插管与动脉走向保持一致，既可使血液压力顺利传送到血压换能器，又可防止插管刺破血管。
3. 观察每一个实验项目后，必须等到血压和尿量基本恢复正常，再进行下一个实验项目。
4. 实验中需多次进行静脉注射，应注意保护兔的耳缘静脉，注射时应从远离耳根部位开始；亦可在实验开始前，从耳缘静脉进行静脉滴注，以后每次注射药物可从静脉滴注管注入。
5. 输尿管插管时，注意不要插入其粘膜层，并避免反复插管而损伤粘膜面造成出血，以致血液凝固堵塞输尿管。
6. 输尿管插管不能扭曲，以免引流不畅。
1． 从耳缘静脉注射20 ml生理盐水和注射5 ml 20 %葡萄糖溶液，会对尿流量产生什么影响，试分析它们对尿量影响的机制。
2． 试述放血20 ml后，机体的动脉血压和尿量有何变化，它们又是如何恢复的？
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中药治疗高血压病的疗效及对颈总动脉粥样斑块的影响
目的:观察熄风化痰祛瘀法治疗风痰瘀阻型高血压(EH)的临床疗效及对颈总动脉(common carotid artery,CCA)粥样斑块的影响.方法:选择风痰瘀阻型EH 60例,随机分为治疗组和对照组各30例.治疗组在对照组基础上,给予熄风化痰祛瘀剂.予硝苯地平缓释片、辛伐他汀片治疗.提示:熄风化痰祛瘀法治疗EH不仅可明显改善患者全身证候,联合硝苯地平缓释片、辛伐他汀片,降压、调脂疗效好,还可减少西药的不良反应、明显减少CCA粥样斑块面积,延缓动脉粥样硬化的进程,以达保护EH患者靶器官的目的.
TANG Na-na
LIU Zhong-yong
作者单位：
江西中医学院,江西,南昌,330006
江西省中医院心血管内科,江西,南昌,330006
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万方数据电子出版社动脉血压的直接测定及影响因素(动脉血压,直接测定,血压,颈总动脉) - 生物医学 - 生物秀
标题: 动脉血压的直接测定及影响因素(动脉血压,直接测定,血压,颈总动脉)
摘要: [动脉血压的直接测定及影响因素(动脉血压,直接测定,血压,颈总动脉)] 实验原理
在正常生理情况下，心血管活动受神经、体液和自身机制的调节。?
心脏受交感神经和副交感神经的支配。心交感神经兴奋时，使心率加快、心肌收缩力加强，心内兴奋传导加快，心输出量增加、动脉血压升高。心迷走神经兴奋时，使心率减慢、心房肌收缩力减弱、房室传导减慢，从而 [关键词:血压 动脉血压 直接测定 颈总动脉 减压神经 动脉 迷走神经 麻醉]……
在正常生理情况下，心血管活动受神经、体液和自身机制的调节。
心脏受交感神经和副交感神经的支配。心交感神经兴奋时，使心率加快、心肌收缩力加强，心内兴奋传导加快，心输出量增加、动脉血压升高。心迷走神经兴奋时，使心率减慢、心房肌收缩力减弱、房室传导减慢，从而使心输出量减少、动脉血压下降。在神经调节中以颈动脉窦-主动脉弓的减压反射尤为重要，当动脉血压升高时,压力感受器发放冲动增加,通过中枢反射性引起心率减慢、心肌收缩力减弱、心输出量下降、血管舒张和外周阻力降低，使血压降低。反之，当动脉压下降时，压力感受器发放冲动减少，神经调节过程又使血压回升。支配血管的交感缩血管神经兴奋时，使血管收缩、外周阻力增加、动脉血压升高。
家兔的压力感受器的传入神经在颈部从迷走神经分出,自成一支，称为减压神经，其传入冲动随血压变化而变化。
心血管活动还受肾上腺素和去甲肾上腺素等体液因素的调节。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。关键取决于心、血管壁上哪一种受体占优势。肾上腺素对&与&受体均有激活作用，去甲肾上腺素主要激活&受体而对&受体作用很小，因而使外周阻力增加，动脉血压升高，但对心脏的作用要比肾上腺素弱。
生理盐水，肝素（500 U&ml-1），1: 10000肾上腺素。
计算机信号采集处理系统，兔手术台，手术器械一套，动脉夹，动脉套管、血压换能器，保护电极，棉线，纱布，棉球、注射器。
1.实验准备：
（1）麻醉和固定：
麻醉家兔，当动物四肢松软，呼吸变深变慢，角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。将麻醉的家兔仰卧位固定于兔手术台上。
（2）分离颈部神经、血管
颈部剪毛，沿颈部正中线切开皮肤5～7 cm，用止血钳钝性分离皮下组织及浅层肌肉，暴露和分离气管；分离左、右两侧颈总动脉（左颈总动脉尽量分离长些，以做动脉插管用）；分离右侧的迷走神经、交感神经和减压神经。在分离的颈总动脉及神经下方各穿一的线备用。并在减压神经下放一钩状记录电极，实验过程中将电极悬空（但不要拉得过紧）。
（3）插动脉插管：
在左侧颈总动脉插入动脉插管。
2．连接实验装置：
（1）计算机信号采集处理系统
将动脉插管通过三通与血压换能器连接，血压换能器与计算机生物信号采集处理系统的压力通道连接；刺激电极与系统的刺激输出连接。 启动计算机生物信号采集处理分析系统，按系统程序提示进行血压信号定标，调整放大增益。
3.实验项目
（1）记录正常情况下减压神经放电波形和动脉血压波形，观察二者变化关系，同时辨认血压波的一级波和二级波，三级波： 一级波（心搏波），由心室舒缩活动所引起的血压波动，心缩时上升，心舒时下降，其频率与心率一致。二级波（呼吸波），由呼吸运动所引起的血压波动，吸气时血压先下降，继而上升，呼气时血压先上升，继而下降，其频率与呼吸频率一致。三级波，不常出现，可能由心血管中枢的紧张性活动的周期变化所致。
（2）夹闭颈总动脉
用动脉夹夹闭右侧颈总动脉10～15 s，观察血压与减压神经放电的变化。
（3）牵拉颈总动脉
手持左侧颈总动脉上的远心端结扎线，向心脏方快速牵拉3 s观察血压与减压神经放电的变化。
（4）静脉注射肾上腺素
待血压基本稳定后，由耳缘静脉注入1:10000去甲肾上腺素0.2～0.3 ml，观测血压与减压神经放电的变化。
（5）刺激迷走神经外周端
待血压基本稳定后，结扎并剪断右侧迷走神经，电刺激迷走神经外周端，观察血压和心率的变化。待血压变化明显时停止刺激。
（6）抬高动物后肢
观察血压的变化。
（1）本实验麻醉应适量，麻醉药注射速度要慢，同时注意呼吸变化，以免过量引起动物死亡。如果实验时间过长，动物苏醒挣扎，可适量补充麻醉药物。
（2）每观察一个项目，必须待血压和心率恢复正常后，才能进行下一个项目。
（3）每次静脉注射完药物后应立即推注0.5 ml生理盐水，以防止药液残留在针头内及局部静脉中而影响下一种药物的效应
（4）实验中注射药物较多，要注意保护耳缘静脉。
（5）实验结束后，必须结扎颈总动脉近心端后再拔除动脉插管。
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