予一次电击，电击强度为0.2～0.5mA，持续2；（2）群居行为法(SocialInteracti；（3）抬高十字迷宫法(ElevatedPlus-；（4）电击探头掩埋法(Shock-probeBu；（三）其它药效学的评价法；1．评价镇静作用可观察抑制自发活动、协同巴比妥类；2．评价抗惊厥作用可选戊四氮(Pentylene；3．评价肌松和运动失调作用可选用测
予一次电击，电击强度为0.2～0.5mA，持续2s。但大鼠可通过脱离瓶嘴来控制受电击时间的长短。记录惩罚期（3min）大鼠的舔水次数。
（2）群居行为法(Social Interaction)：实验前将雄性大鼠(体重220～260g)单养5～7d，并按体重相近原则两两配对分组。实验第一天，配对大鼠给药后一定时间置于一个60cm×60cm×35cm的黑色木制敞箱中央，分别观察在强光(照度300 1ux)不熟悉和弱光(照度30 lux)不熟悉条件下，10min内大鼠的主动接触时间。主动接触包括嗅、咬、追、推、踢、理毛、骑跨、爬或钻、格斗和扭打等，但不包括相互倚靠等被动接触。为同时观察大鼠的运动活性与站立，可在离箱底4.5cm和12.5cm高的箱壁上安装红外光电管。在箱上部一定高度悬挂一白炽灯，以使照度达到实验要求。第一天的实验结束后，连续2d将大鼠单个放在箱内熟悉环境，每天10min，第四天进行强光熟悉和弱光熟悉条件实验，方法同前。
（3）抬高十字迷宫法(Elevated Plus-maze)：十字迷宫包括两个50cm×10cm的相对开臂(Open Arms)和两个50cm×10cm×40cm的相对闭臂(Enclosed Arms)，闭臂上部敞开，中央有一10cm×10cm的开阔部。迷宫离地面高50cm。实验用雄性大鼠，体重200～250g。将大鼠置于中央开阔部，头朗闭臂。观察者在离迷宫中心1m以外记录5m内大鼠进人开臂和闭臂的次数与在两臂滞留的时间(以四肢全部入臂或出臂为准)。计算大鼠进入开臂的次数和时间分别占总次数(两臂次数之和)和总时间(在两臂滞留时间之和)的百分比。
（4）电击探头掩埋法(Shock-probe Burying)。
（三）其它药效学的评价法
1．评价镇静作用可观察抑制自发活动、协同巴比妥类及乙醇等的睡眠或中枢抑制作用。
2．评价抗惊厥作用可选戊四氮(Pentylenetetrazol)、最大阈值电惊厥法等。
3．评价肌松和运动失调作用可选用测量转杆、爬网落下时间等方法。
4．评价遗忘作用可选用一次性被动回避反应(Passive Avoidance)如明暗箱(Step Through)或跳台(Step Down)法等。也可选用主动回避反应(Active Avoidance)如穿梭箱(Shuttle Box)、跳杆(Pole Climbing)法等。或选用迷宫法等。
二、试验设计
试验动物：成年健康动物。小白鼠、大白鼠，兔应注明种系，长期实验选用雄性动物为好。 给药途径：途径应采用拟推荐的临床用药途径。如推荐口服用药，还应采用一种注射途径。 剂量：至少3～5个，每个剂量组至少5～10只动物，其中至少一个剂量组与对照组相比有显著性差别，其它剂量组也应呈现规律性变化。
对照：实验可用自身对照或组间对照。选用自身对照时应采用交叉平衡实验设计，如半数动物先观察对照值，半数动物先行给药试验，后取对照值。需要重复使用药物的动物，半数动物剂量由大到小，以减少行为耐受现象的干扰。重复用药的时间间隔至少7～10d，根据药物剂量和作用持续时间决定。重复用药次数根据实验需要确定。
三、结果评价
创新药物应做下列模型：①抗焦虑剂作用应至少二种动物、三种模型，大鼠模型至少二种，其中
最好有一条件反射法。非苯二氮卓类药物如果在上述动物模型上抗焦虑作用的效果不一致或强度较弱时，应提供该药对苯二氮卓(BZD)受体无竞争性结合作用的实验数据；②要求对镇静、抗惊厥、肌松和致遗忘作用等进行全面评价。
四、注意事项
1．在以食物或水为强化时，实验时的动物体重应控制在自由进食时的80%～85%，给药剂量按实验时体重计。以电击为强化时，应尽量采用高压、高阻、低电流刺激。注意动物行为昼夜节律变化，同一性质的实验应在一天内相对固定的时间范围内进行。
2．为确证新药的抗焦虑药效，尽量选用国际文献上较为公认的焦虑动物模型。使用自建的焦虑动物的模型，应有较详尽的已知抗焦虑剂如安定或氯氮卓(Chlordiazepoxide)等的药效学数据，以证明方法的可靠和可信性。
3．BZD受体激动剂和部分激动剂均有抗焦虑作用，应予区分。区分的原则是部分激动剂仅显示激动剂作用谱的一部分，甚至可以拮抗或部分拮抗BZD受体激动剂(如安定、氯氮卓)的镇静、肌松、抗惊厥等作用。如新药属BZD受体部分激动剂，应提供较全面的拮抗BZD受体激动剂有关作用的资料。
4．如属重要创新药物，应提供一种非啮齿类动物的抗焦虑作用的实验数据。
第十三节 抗抑郁药物研究
一、模型及方法
1．大鼠强迫游泳实验
动物在恶劣环境下，会出现逃逸行为，当不能逃逸时，便出现行为绝望，该法是利用绝望行为建立的一种能有效地评价抗抑郁药的大鼠抑郁模型。
（1）实验装置：直径高18cm，40cm的玻璃缸，内装适量25℃温水，水深45cm。
（2）实验方法选用体重160～180g雄性大鼠，置于水缸内，预试15min。在开始的2～3min内，大鼠不断地游泳，抓爬缸壁或钻人水中，试图逃出。然后活动减少，间断出现不动或飘浮状态，称为绝望行为，其持续时间越来越长，入缸后5～6min该行为持续时间达峰，在余下的时间内，不动时间约占80%。预试结束后，取出大鼠，在32℃烤箱内烤干后，放回饲养笼。24h后，进行正式实验，先注射药物或盐水，间隔一定时问后，将大鼠再次放人缸中，观察5min，记录其不动时间。
2．小鼠强迫游泳法
其原理与大鼠强迫游泳法相同。
（1）实验装置20cm高，直径14cm的量筒，内含适量25℃的温水，水深一般为10cm。
（2）实验方法选用体重20～24g雄性小鼠，给药或盐水后适当时间，将小鼠放入量简内，观察6min，记录后4min内不动时间。
3．小鼠悬尾法
由Steru等(1985)建立的另一种行为绝望法。
（1）实验装置一排带有间隔板的实验架，间隔板使实验架分成若干(多为10个)实验小室。在
贯穿的横杆上，每一小室内有一可夹住小鼠尾部使其倒悬的夹子，也可使用粘膏条悬挂。
（2）实验方法雄性小鼠，体重20～25g，给予药物或生理盐水后适当时间，将小鼠倒悬在实验小室内，观察5或6min内小鼠不动时间。抗抑郁药可减少不动时间，中枢兴奋剂在有运动兴奋作用的剂量下，也呈假阳性。
4．大鼠获得性无助法
大鼠遭受无法逃避的电击以后，将其放在可以逃避电击的环境下，呈现操作行为缺欠，如逃避行为障碍、自发活动减少等，通过相应的技术手段可检测出操作行为的缺欠，并用以检测抗抑郁药的翻转效应。
（1）实验装置
电击训练装置：不可逃避电击箱，体积不要太大，带有电网底栅和顶盖的箱体。和可随机变换电源极性和高压高阻低电流电刺激器。
检测行为缺欠的装置：可用大鼠穿箱也可用大鼠压杆操作行为箱，或使用跳台箱，该跳台箱带有一个供实验者操纵的跳台，可将其推入也可拉出。
（2）实验方法选用雄性大鼠，单个放在电击箱给予电击，持续40～60min。电击后形成的逃避行为缺欠，可持续数日甚至数周。利用这段时间可用亚慢性(4～7天)给药法检测药物的作用，也可于次日用一次给药法检测药物的作用。在使用穿箱法和压杆操作行为箱时，进行防御性条件回避反应训练，记录其逃避行为成败次数和潜伏期。使用跳台法主要观察其逃避行为成败次数。首先将跳台推入箱内，给予电击，记录其逃避行为成败次数。如果大鼠给予电击后未跳到台上(失败)，电击持续10s便终止；如果跳台推人后大鼠跳到台上(成功)，允许其在台上停留10s，然后拉出跳台。跳台法的实质是以跳台的推人为条件刺激的逃避反应训练，用以观察逃避反应的获得情况。
5．不可预测性长期应激实验
大鼠在遭受长期应激后出现一系列情绪性行为改变，如自发活动减少、学习能力下降、食欲减退等。对这一方法进行改进，降低了应激强度，为不可预测性长期温和应激实验，并将药效观察指标规范化，采用蔗糖水饮用量测定法。遭受慢性应激刺激的大鼠出现饮用量下降的现象，称之为快感缺失。
（1）实验装置
应激仪器设备：根据所用应激种类选用。常用的应激包括：电击(需电击刺激器和电击室)，振荡(需平台振荡器)，声光刺激(需用发声、发光装置)，寒冷(需冷冻室)等。其他应激包括：禁食、禁水、将动物置于倾斜45的饲养笼内、或置于潮湿笼中(垫料中加水)等。
药效测定装置：根据评价指标选用，自发活动测定可采用开场箱(Openfield Box)，逃避行为测定可选用穿梭箱(Shuttle Box)，饮蔗糖水量测定，需带有刻度的饮水瓶等。
（2）实验方法选用雄性大鼠，事先随机分为应激对照组和用药组，也可设非应激对照组。应激组动物按预先设定好的应激方案实施，给药组按事先安排好的用药方案用药，应激对照组则给生理盐水。应激和用药时间持续3～5周，甚至9周。于最后一次应激或用药后若干小时，做药效学实验检测。 。
6．脑损伤模型-大鼠嗅球切除模型
大鼠切除嗅球后出现许多行为改变，如自发活动增加，学习记忆能力下降，应激反应增强，进食和性行为改变等。此法检测抗抑郁剂，具有良好结果，并一直沿用至今。
（1）手术方法：选取体重300～350g雄性大鼠，经过至少3～4天每日数次的抚摸之后，用三溴乙醇(250mg／kg，ip)或水合氯醛(375mg／kg，ip)等麻醉大鼠。
从大鼠囟前1cm至前囟后1cm正中线处纵切头皮，暴露颅骨。在距离前囟前面8mm、正中线两侧2mm处分别钻通颅骨，使出现两个2mm直径的小孔。用连在水泵上的钝的皮下注射针，借助负压将嗅球吸出。用止血海绵填充小孔，四环素粉末洒在伤口上，缝合皮肤。大鼠经过14d左右的恢复期后可以进行实验。在恢复过程中，每日仍需抚摸动物。假切除大鼠处理方式基本同上，只是嗅球不吸除。
（2）测试方法
①开场活动试验：实验装置可用先进的摄像自动记录分析的现代仪器，也可自制木制开场装置，目测。一般观察3min内大鼠活动情况，具体指标多以运动量为主(如运动距离、时间、速度、跨格数、站立数等)。嗅球切除大鼠活动量增加，抗抑郁剂可使其减少。
②被动回避实验：跳台(Step-Down)被动回避：在电击箱内放一个木制平台，平台高出电击箱底大约5cm左右。将大鼠先置于电击箱(不予电击)中使之熟悉环境1min。然后将大鼠放于平台上，只要其4个爪全部接触到电击箱底部就给予一次2s 0.6mA左右的电击，观察3min，记录大鼠遭电击的总次数。大鼠嗅球切除后遭受电击次数明显增多，反映了嗅球切除能引起被动回避反应欠缺。当给予抗抑郁药后，能减少遭电击的次数。
③避暗(Step Through)被动回避：实验箱由明暗两室组成，隔板下部有一通道供大鼠出入。暗室网栅与电击仪相联。如大鼠进入暗室，则遭电击。将大鼠放人暗室，并给予一次电击，大鼠将逃到明室，当大鼠的4个爪又重新回到暗室时，将再次受到电击，此时记数为1，观测2min，记录大鼠遭受电击的总次数。
④舔水被动回避：在连续4d的实验中，大鼠每日禁水23.5h。第1、2d将大鼠放人实验箱内接受10min的舔水训练，第3、4d进行测试。测试时，每当大鼠舔水20次自动给予一次电击。记录大鼠舔水次数及遭电击次数。嗅球切除大鼠遭受电击次数将明显多于假切除大鼠，抗抑郁药能明显减少嗅球切除大鼠遭电击次数。
7．操作行为模型-大鼠72秒低频差式强化程序法
DRL 72&程序的特点是训练动物压一次操作杆后，需等待72s后再压杆方可得到强化(食粒或水)，如果提前压杆，不但得不到强化，反而需再等72s压杆才有效，因此，这是一个要求动物不要过多压杆的低压杆反应速率的操作行为，有人称之为“等待”(Waiting)行为。Mc Giure＆Seiden(1980)发现三环抗抑郁剂可以在大鼠这一模型上降低压杆反应次数，增加强化次数。不同类型的抗抑郁药包括单胺氧化酶抑制剂、非典型(Atypical)抗抑郁剂、选择性5-HT重吸收抑制剂和电惊厥等均显示良好效果。药理分析研究表明，5-HT神经功能在这一模型上起着重要作用。
（1）实验装置大鼠操作行为仪。
（2）操作步骤：大鼠在每次受训前禁水22.5h，每次受训后允许其有20min饮水时间。
①每个大鼠首先用FR1-FI60s程序进行饮水强化训练，即当大鼠压杆时，每一次压杆都可得到一次强化，其间夹杂FI60s程序，即问隔60s压杆才可得到强化。在连续3d的每日1h训练中仍未学会的少数大鼠，由实验者单独训练。
②所有大鼠接受2周的DRL 18-s训练，每天训练lh。
③大鼠接受DRI。72s训练，每天训练1h。当大鼠在连续5d以上的训练中平均总反应率的标准误不超过相应平均值的10%时，认为此大鼠的反应达到稳定。此过程大致需要8周。
④给药测试。每只大鼠均可多次给药，以剂量逐渐加大的顺序用药，加大用药剂量应在上一次用药后间隔一周或一周以上不用药后进行。每次给药后一定时间进行DRL72-s测试。对照可选择开始给药前的5d的平均值。
（3）观测指标
反应率：压杆次数占对照操作的百分数。抗抑郁药常使反应率下降。
强化率：获得饮水次数占对照数的百分数。抗抑郁药常使强化率升高。
压杆间歇期分布：DRL72s程序操作要求大鼠压杆一次后停歇期(IRTs)呈随机态分布，其峰值均在72s以下。药物作用可以改变其分布，抗抑郁剂可使峰值向右移动，但一般不改变分布曲线下面积。
8．利血平拮抗(Reserpine Reversal)
（1）原理利血平是一种囊泡再摄取抑制剂，它使递质留在囊泡外，易被单胺氧化酶降解，从而使儿茶酚胺(NE、DA和5-HT)耗竭，引起行为和生理上的变化。对利血平引起的行为和生理变化的拮抗是最早发展的抑郁动物模型。经利血平处理的动物出现上眼睑下垂、体温下降及强直症状，预先用三环抗抑郁药及单胺氧化酶抑制剂处理，能拮抗上眼睑下垂及体温下降的症状。然而此实验不能检测许多结构上不同于三环抗抑郁药及单胺氧化酶抑制剂的新抗抑郁药，却对于很大范围的非抗抑郁药有效，如兴奋剂、多巴、α-肾上腺素能激动剂、β-肾上腺素能阻断剂及抗组胺药。事实上此实验包含三方面独立的生物学检测，因为利血平引起的上眼睑下垂、体温下降及强直分别被α-肾上腺素能或5-HT能激动剂、β-肾上腺素能激动剂及DA激动剂所拮抗。
（2）实验方法及观测指标选用18～22g雄性小鼠。
上睑下垂（ptosis）的观测：静注2mg/kg利血平，同时腹腔注射或口服药物或生理盐水(对照)，1h后将动物放于支架上观察15s，比较给药组和对照组中眼睑至少关闭一半的动物的个数。
运动不能(Akinesia)的观察：静注2．5mg/kg利血平，同时口服药物或生理盐水(对照)，1h后将动物放于直径7.5cm的圆形白纸的中央观察15s或更长时间，比较给药组和对照组中仍然待在圈内的动物的个数。
体温下降(Hypothermia)的观察：腹腔注射5mg/kg利血平，同时口服药物或生理盐水(对照)，4h后将探头插入动物肛门内1.5至2cm处测量肛温，比较给药组及对照组肛温的差异。
9．高剂量阿朴吗啡的拮抗
（1）原理阿朴吗啡(Apomorphine)是多巴胺受体激动剂。Lapin etal(1968)发现一些抗抑郁剂
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&详情介绍悬尾实验是进行抑郁研究的经典试验。啮齿类动物极其不喜欢处于被倒悬的状态。因此，人为将动物倒悬时，动物会拼命挣扎。但当其发现无法逃脱这种状态时，则会放弃挣扎进入静止不动的状态。Gene&I推出的悬尾实验研究系统，采用了全外形识别技术，与之前的帧对比技术比较取得了很大的进步。在动物停止挣扎后身体晃动时，帧对比技术会造成测量的误差。而Gene&I的悬尾实验系统会完全防止这种识别错误的发生。并提供了点击回放功能，让您对于识别的准确率准确验证。了解详细信息，请联系400-。Gene&I悬尾系统组成&&& &分析参数动静止中间状态&&硬件规格材质：医用ABS大鼠规格长度：35cm宽度：35cm高度：60cm挂钩长度：25cm小鼠规格长度：35cm宽度：35cm高度：60cm挂钩长度：15cm&&ReferenceMichael L. Lehmann and Miles Herkenham (2011) Environmental Enrichment Confers Stress Resiliency to Social Defeat through an Infralimbic Cortex-Dependent Neuroanatomical Pathway, J. Neurosci., Apr 59 – 6173.Hayashi E, Shimamura M, Kuratani K, Kinoshita M, Hara H.,(2010) Automated experimental system capturing three behavioral components during murine forced swim test., Life Sci. 2011 Feb 28;88(9-10):411-7. Epub 2010 Dec 21. Hines, L. M., Hoffman, P. L., Bhave, S., Saba, L., Kaiser, A., Snell, L., et al. (2006). A sex-specific role of type VII adenylyl cyclase in depression. J Neurosci, 26(48), .&
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产品系列应用方案关于我们联系我们【求助】抗抑郁症药强迫游泳实验时,何时开始开始记时不动时间啊[转]
19:33&&&&分享&
我最近一直在做预实验,弄了一个大桶用热得快把水加热到30度把老鼠扔进去,老鼠一入水就不停挣扎,然后不挣扎就沿着桶的边子不停的游啊游有时还来回穿着游别提多高兴啊就象在嘲笑我一样,一般4分钟的时候差不多玩累了倒是基本不动了,但是也很少看见书上说的那种完全的,身子直立的竖在水里不动啊,我观察到倒是有一些时间老鼠四肢(主要下肢)不停打水不让自己沉下去,这时候它也基本不动了,我想这个应该算入记时吧,可是有个问题时老鼠好不容易不动了,耳朵却慢慢入水,你们观察到没有,只要它耳朵一沾水它就要用力摇头甩水,好在身子这时也是基本不动的,那么这个甩水的时间算不算不动时间呢,还有是不是必须老鼠直立在水里才算不动呢,我的老鼠有时候竟然斜着睡在水里也不动呢这算不算呀,哎呀也不知道说清楚没有晕请前辈们指点一二啊
另外请教个事情哈,TST,FST实验一般有大(小)鼠强迫游泳和小鼠悬尾对吧,可是怎么没见过大鼠悬尾呢是不是一般不做大鼠悬尾啊
gerry111 edited on
08:57&&&&分享
小鼠迫泳实验所用的容器体积一般有所要求，应该在同等条件下比较，我们作此实验时就是用的同一体积的大烧杯进行的，条件该精确一些。
大鼠悬尾没有做过，为节省起见，小鼠悬尾之后再养几天还可以做迫泳实验。在陈奇05版的《中药药效研究思路与方法》上也没有见大鼠悬尾方法介绍，原因不详。
3&不动时间***作时也觉得很难界定，当时把出现不动和漂浮状态时双脚“伸直”的状态定位为不动时间，只要下肢在运动就不计时，那天没有仔细想清楚，。你再参考上面说的那本书吧。
nanahappy1314 edited on
丁香园准中级站友
11:01&&&&分享
呵呵谢谢楼上的前辈啊,不过我问的是关于大鼠的游泳实验,小鼠的还没开始做我
计时的时间时间应该是小鼠下沉时间,这句话真不好理解啊,我看书上都是计时的时间应该是大鼠在水中完全不动或者微小动作使自己不下沉的时间啊.你说的小鼠下沉时间,怎么理解?望指教
13:28&&&&分享
我做过小鼠的FST,
一开始用的是ICR,基本上不会彻底不动，后面用的是昆明种小鼠，均有明显的不动状态,就是"在水中完全不动或者微小动作使自己不下沉".
我也正在做抗抑郁方面的实验，可是用阳性药却常常做不出阳性结果，很是郁闷.你做的实验阳性药结果好吗?
11:54&&&&分享
我们实验室以前做过抗抑郁症的药物的大鼠的游泳试验。预试的时候发现大鼠的游泳试验很难判定，所以改做小鼠的游泳试验了，还有小鼠的悬尾试验。小鼠的游泳试验的不动的时间的判定是当它入水后四分钟以后再开始计时。小鼠的不动很明显。
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昼夜节律、性别和品系对小鼠悬尾实验的影响
目的 研究昼夜节律、性别和品系等因素对小鼠悬尾实验的影响,为选择敏感、有效的小鼠抑郁模型提供可靠的实验参考.方法 在相同的实验环境中,通过昼夜节律变化,对不同性别、品系的昆明、BALB/C和C57BL/6小鼠在悬尾实验中的不动时间进行研究分析.结果 ①三种品系小鼠在昼夜间的悬尾实验结果表明,雄性昆明小鼠白天的平均不动时间[( 114.24±11.18)s]明显长于夜间的不动时间[(65.39±19.17)s]；而BALB/C和C57BL/6小鼠昼夜间的不动时间无明显差异.②不同性别的小鼠悬尾实验表明,BALB/C雄性小鼠白天的平均不动时间[(68.57±11.27)s]明显少于雌性[(113.33±3.87)s]；而昆明和C57BL/6小鼠雌雄间的不动时间无统计学差异.③在相同条件下品系对小鼠悬尾实验结果有明显影响,C57BL/6小鼠的悬尾不动时间均显著长于昆明和BALB/C小鼠.结论 为增加小鼠悬尾实验的敏感性、可靠性宜选昆明雄性、BALB/C雌性小鼠在白天进行实验；相比于昆明和BALB/C小鼠,C57BL/6小鼠实验结果较为稳定.
Abstract：
Objective To investigate the influence of circadian rhythm,gender and stain on the tail suspension test in mice.Methods The immobility time of male and female Kunming,BALB/C and C57BL/6 mice in daytime or night were analyzed.Results ① The immobility time of Kunming mice during the day ( ( 114.24 ±11.18)s) was significantly more than that at night ( (65.39 ± 19.17)s).② The immobility time of male BALB/C mice( (68.57 ± 11.27 ) s) was significantly less than that of female BALB/C mice( ( 113.33 ± 3.87 ) s).③ The immobility time of C57BL/6 mice was significant more than that of Kunming and BALB/C mice under the same condition.Conclusions Circadian rhythm,gender and strain could significantly affect the immobility time of mice in tail suspension test.To increase the sensitivity and reliability of the tail suspension test,male Kunming and female BALB/C mice should be tested during pared to Kunming and BALB/C mice,the results of C57BL/6 mice were more stable.
SONG Si-jia
SHI Jian-guo
LIU Fei-hu
WANG Jun-feng
DANG Yong-hui
作者单位：
陕西省西安市精神卫生中心,西安,710061
日照请精神卫生中心
西安交通大学宗濂书院临硕64班
启德书院口腔71班
医学院法医系
年，卷(期)：
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基金项目：
陕西省卫生厅卫生科学研究基金
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悬尾实验动物行为仪器
悬尾实验视频分析系统是一种经典而又能快速评价抗抑郁药物、兴奋药物、镇静药物药效的方法。其原理是利用大小鼠悬尾后企图逃脱但又无法逃脱，从而放弃挣扎，进入特有的抑郁不动状态。抗抑郁药物、兴奋药物能明显地缩短改变其状态。该仪器适用于大鼠、小鼠或其他实验室动物，通过固定动物尾部使其头向下悬挂，记录处于该环境的动物产生绝望的不动状态过程中的一系列参数。产品提供数据通讯接口连接至PC机，配合专用测试软件对实验过程进行分析并可打印实验报告。可广泛用于大、中专医科院校、科研单位进行实验教学以及抗抑郁类药物的研究工作。
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保留实验过程录像，实验者可回放人工校验
领先的核心算法，有效保证识别的抗干扰性和准确性；
采用开发式、模块化设计，系统可扩展性强，可外接其他的分析模块，轨迹点坐标序列数据和指标结果可导入Excel中；
分析灵活，支持时段分析，支持定时终止和人工终止，并具有丰富的显示方式，能对动物的运动情况采用轨迹图、参数指标、曲线等多种显示方式，并可生成完整报告，供打印输出；
可定时录制视频图像，以多种方式显示指标，提供轨迹图、轨迹坐标点和指标结果的导出功能。
实验分析指标：
硬件系统：
1、设备材料： 铝合金框架及亚克利或有机板
2、尺寸规格：
3、摄像头： SONY枪式摄像机1个
4、色彩： 黑白或彩色
5、最低照度： &0.005Lux
6、视频采集卡： USB2.0外置式
7、摄像针频速率： 28/30帧600x
8、摄像分辨率： 640*480
9、摄像机电源： 12v 5A
10、摄像机类型： 2.8~12mm自动变焦
11、加密狗类型： USB2.0接口
12、视频采集模块： 天敏SDK3000
13、底部触觉方式： 栅栏，平板，网格
14、信号传输方式: 信号电源一体线10米
15、可导入Excel
以上内容为悬尾实验动物行为仪器，本产品由广州飞迪生物科技有限公司直销供应。
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公司认证：
公司地址：中国(大陆) 广东省 &中国 广东 广州
珠村东横三路8号广桥工业园A栋505
注册资本：
企业类型：其他有限责任公司
主营行业：**低温冰箱,移液器,电动移液器,电子天平,离心机,超声波清洗器,酶标仪,洗板机,半自动生化仪,PCR仪,均质器,细胞破碎机,细胞粉碎机,气相色谱仪***成像分析系统,电泳仪,电泳槽,小动物呼吸机,电子压痛仪,多功能诱咳引喘仪
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