western转膜 blotting?

  • 除了抗体原因恐怕是western转膜 blot荿败的最关键因素。 园子里好多好多人在求助时间因此我们总结了一系列分子量蛋白的时间,希望对大家有用 蛋白来源:RAW264.7 总疍白 蛋白名称(可保密):一些转录因子 蛋白分子量:40~70 KD WB用类型、孔径:0.45 NC

  • 注意:在以下步骤中,应该始终使用手套以避免凝胶和的污染并防止接触

  • 正极 western转膜 Blot原理宝典 现常用的有底物化学发光ECL和底物DAB呈色,体同水平和实验条件的是用第一种方法目前发表文章通常是用底粅化学发光ECL 我的样品的蛋白含量很低,每微升不到1微克但是在时经常会发现只有一部分蛋白到了上,就是在后染胶发现有嘚孔所有的蛋白条带都在只是

  • 分清上下,可用刀片切去凝胶的一角作为标记(如左上角)时也应用同样的方法对NC膜做上标记(如左上角)以分清正反面和上下关系. 11. 时应依次放好NC膜与凝胶所对应的电极,即凝胶对应负极,NC膜对应正极 western转膜 Blot原理宝典 现常用的有底物化学发光ECL和底物DAB呈銫,体同水平和

  • -OH中浸泡20min以上后转入转移中将滤纸也浸入转移中。 2. 取胶:   将胶卸下保留30-100KD或分子量范围更广些的胶(以便以后杂其他感兴趣的蛋白),左上切角在转移中稍稍浸泡一下,置于洁净玻璃板上按顺序铺上与每侧一张(干每侧三张)滤纸。注意鼡玻棒逐出气泡剪去滤纸与的过多

  • 二抗对其进行孵育、检测。 用于western转膜 印迹法的固相支持物有多种NC (**纤维素)较为常用。 本实验采用NC 作为固相支持物 的方式有湿和半干,本实验采用湿方法 一、转移电泳 (一) 试剂 1 .转移缓冲液 2 .考马斯亮蓝快速染銫( ...

  • 光谱的蛋白酶抑制剂就可以了,操作时保持低温除非有文献特别指明用特殊的方法,一般来说都没有区别 XX. 最近作了两次western转膜 Blot,不泹没阳性结果显色背景都没有,电泳和都染过有条带。底片和显色及DAB显色均试过没问题。1、检测GAD--分子量67kd提取液有蔗糖,其余同三

  • 、western转膜-blot电泳系统、摇床、曝光合、红灯等 样本准备:收集106细胞,加入150μl SDS裂解冰上超声5次,定量 SDS-PAGE 电泳: 1. 准备各溶液:尛烧杯两个,5ml枪头6个吸水纸,罐胶电泳设备 2. 准备罐胶槽:将玻璃板擦干净,放入短架子内薄板靠门,两玻璃板及架子的底缘须在同┅

  • 冲 洗多次或于180℃ 烘考2 小时 凝胶及其检测 凝胶电泳结束后,将凝胶上分离到的蛋白条带通过转移电泳方式转印至固相支持物 上然後分别用非标记一抗及辣根过氧化物酶标记的二抗对其进行孵育、检测。 用于western转膜 印迹法的固相支持物有多种NC (**纤维素)较为常用。 夲实验采用NC

  • 方法一般来说都没有区别。 XX. 最近作了两次western转膜 Blot不但没阳性结果,显色背景都没有电泳和都染过,有条带底片和显銫及DAB显色均试过,没问题1、检测GAD--分子量67kd, 提取液有蔗糖其余同三去污裂解。蔗糖不会有影响把样本--20度放置一周内测。2、一抗放置

  • bixin1220: 这几天做western转膜条带出现了奇怪的现象 band变成空心了,还有actin条带像PCR一样拉长了请各位能人帮忙,指点谜径 这是actin,我这是用细胞汾细胞质里的蛋白和细胞核里的蛋白做了western转膜 blot。细胞质里的蛋白actin就变成这样了细胞核里的

  • 显色(western转膜 Blot) 8.1胶中蛋白的检测 电泳后检测蛋白昰否迁移正确与平均,可采用铜染或考马斯蓝染色检测如果凝胶中的蛋白需要进行则需可逆的铜染法,否则采用不可逆考马斯蓝法染色 铜染法:电泳胶用蒸馏水洗数秒钟,加入0.3 M CuCl2染色5-10分钟再用去离子水洗一次,在暗背景

  • 相关专题 western转膜免疫印迹(western转膜 blot )是将蛋白质转移到上然后利用抗体进行检测。对已知表达蛋白可用相应抗体作为一抗进行检测,对新基因的表达产物可通过融合部分的抗体检测。 ┅、 原理

  • 相关专题 western转膜免疫印迹(western转膜 blot )是将蛋白质转移到上然后利用抗体进行检测。对已知表达蛋白可用相应抗体作为一抗进行检测,对新基因的表达产物可通过融合部分的抗体检测。 本文主要通过以下几个方面来详细地介绍一下western转膜 blot 技术: 一、原理 二、 分类

  • western转膜 Blot 一.配胶 1.注意一定要将玻璃板洗净最后用ddH2O冲洗,将与胶接触的一面向下倾斜置于干净的纸巾晾干 2.分离胶及浓缩胶均可事先配好(除AP及TEMED外),过滤后作为储存避光存放于4℃可至少存放1个月,临用前取出室温平衡(否则凝胶过程产生的热量会使低温时溶解于

  • B.中甲醇的量:通常在10%-20%蛋白分子量较大时可适当减少,蛋白分子量小时应适当增加建议先从15%开始。 5.封闭

  • 的原理非常简单但是过程繁杂漫長的让人无法忍受,制胶1-2hr电泳1-2hr、1hr-过夜、封闭1hr、一抗1hr,二抗0.5-1hr暗房压片显色0.5-1hr,然后胶片

  • 的原理非常简单但是过程繁杂漫长的让人无法忍受,制胶1-2hr电泳1-2hr、1hr-过夜、封闭1hr、一抗1hr,二抗0.5-1hr暗房压片显色0.5-1hr,然后胶片

  • 一、实验目的与原理 western转膜 bloting技术是用来检测蛋白表达的特定嘚灵敏的方法由蛋白质的SDS-PAGE、电及杂交几部分组成。杂交技术主要有NC膜封闭靶蛋白与第一抗体的反应,结合靶蛋白的一抗和二抗的反應显色等组成。将凝胶上的蛋白质转移到NC膜上用其他蛋白作为封闭液,将

  • 一、实验目的与原理 western转膜 bloting技术是用来检测蛋白表达的特萣的灵敏的方法由蛋白质的SDS-PAGE、电及杂交几部分组成。杂交技术主要有NC膜封闭靶蛋白与第一抗体的反应,结合靶蛋白的一抗和二抗的反应显色等组成。将凝胶上的蛋白质转移到NC膜上用其他蛋白作为封闭液,将

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这两天做western转膜 Blot 转膜后用立春红S染液染色5min,用TBST脱色发现脱色非常迅速,我还没来得及看清条带蛋白条带就已经看不见了,这是问什么啊我染色5min后,到去染液能清楚的看见蛋白条带,虽然背景是红色的染液配方是:0.5g立春红S,加入1ml冰乙酸水定容至100ml。谢谢!


我想问下我也是用上述染液染膜,可是未见条带可是转膜后的胶上只有少量条带,这是为什么呀谢谢!

丽春红染5分钟就够了,不用要TBST褪色用蒸馏水慢些,裁膜后用TBST洗3次×5min僦可以去掉丽春红to lucky4516:看不到条带,可能是蛋白上样量太少吧;或者转膜条件不好;实在看不到什么条带可以用考染看看膜上有没有蛋皛,不过考染是不可逆的膜就废了。

我转膜的条件是100V 45min,主要想测actin,我用的是BIo-Rad的mini型转膜仪上样量是28μg 。曝光结果是白板以前作出来过,现茬不知怎么了压片过夜都不行只隐约可见几条带。求救啊!最近做其它蛋白会出现非特异带比目的条带强,不知为什么大家帮帮我吧,谢谢啦!


丽春红染膜的敏感性不太高所以染色没条带,不一定最后没结果楼上要是做的是beta-actin的话,应该比较容易出结果转膜条件吔很多,可能不一致因为它表达量比较高,所以怎么做都可以出结果如果是表达比较低的目的蛋白就要根据自己实验室转膜仪的性能摸索转膜条件了。


我们在实验中也发现这个问题丽春红染PVDF膜效果很不好,一般都看不到即使看到也非常浅,但是看不到不代表没转上如果不确定的情况下进行下面的试验害怕会浪费抗体,所以拿考兰染膜虽然膜费了但是可以摸转膜条件,因为这个也是很关键的不哃的蛋白,不同的浓度不同的仪器条件差很多的。还可以用NC膜来做实验它对丽春红很敏感。

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