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长距离运输细胞可以使用块状干冰的运输方法
作者：郑州冷王干冰有限公司 日期： 9:21:49 信息来源：
　　块状干冰运输方法：较为常用，也很保险，成本不算高，但航空禁运，如果本人携带，汽车、火车均可，20h有5kg干冰足矣，但为保险起见10kg左右干冰为好。　　充液运输：此种方法较为简单。一般选择生长良好的细胞，以生长1/3～1/2瓶底壁为宜，去掉旧培养液，补充新的培养液至瓶颈部，保留微量空气，拧紧瓶盖，并用胶带密封，放在一运送盒内，用棉花等做防震防压处理。靠附着于细胞表面的培养液，可使细胞短时间不受损，充液是最简便可行的，有人这样带到美国的。　　液氮运输：短途首选，长途不够安全，航空不行，铁路好像要过安检，汽运较颠簸容易泄露，运输用的小型液氮罐也比较贵，国产的也至少要几百元；& & 哪里有干冰卖？郑州冷王干冰公司为您提供纯度最高的干冰产品。如果您需要干冰请与我厂工作人员取得联系，我们根据您的需求，为您提供大量优质，纯度高的干冰产品，一次合作就可以知道我们的实力，一次合作我们会成为永远的朋友！相关阅读推荐：[][]
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上一篇：下一篇：24孔培养班接种细胞时，如何使之均匀分布(接种,均匀分布,分布均匀)
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[24孔培养班接种细胞时，如何使之均匀分布(接种,均匀分布,分布均匀)] 我的细胞在接种在24孔板上时，孔的 周围细胞密集，中间细胞稀少，我试了很多次均如此。请问怎样操作才能使细胞分布均匀？ 关键词:[接种 均匀分布 分布均匀]…
我的细胞在接种在24孔板上时，孔的 周围细胞密集，中间细胞稀少，我试了很多次均如此。请问怎样操作才能使细胞分布均匀？
回复我以前也遇到过类似的情况，最后想到一个方法。用每个孔所需的培养基量x24 的培养基总体积，去稀释细胞，用吸管充分混匀，然后再加到每个孔内，效果好多了。我做转染时种板 都是这么办的。不妨一试！回复周围细胞密集，中间细胞稀少这种情况一般是种板时培养液过少,液面总是呈一凹面,如果液面过低,孔中间就基本上没什么细胞,所以种板时一定不能吝啬培养液,待贴壁后可以用比较少量的培养液处理周围细胞稀少，中间细胞密集这种情况一般是种板后过于晃动,特别是旋转着晃动.有人才用十字方向的晃动方法使细胞分散均匀.但我个人认为,将细胞加入孔后,用枪或移液器充分吹打混匀后就不用,也不能再晃动,甚至拿着孔板走路带来的震动都会让细胞往中间集中.当然,无论是哪种情况,首先都需要保证细胞在种板时时均匀分布的,即种板时的细胞悬液一定要混匀回复谢谢lwjssry ，我觉得你说的很有道理。 周围细胞密集，中间细胞稀少，是由于接种时加的培养基少了。我昨天接种了一板，每孔接种前均摇匀瓶中悬浮细胞使均匀，接种后板子置于原地不动半小时，待细胞沉于板底，再放回培养箱，情况稍好一些，但中间细胞仍比周围少。请问lwjssry，接种时还有其他注意事项吗？回复以下是我的一些个人经验,愿共享:细胞分布均匀与否有一点很关键,即每种细胞是有个体差异的,别人的细胞操作不一定适合于你.所以要靠自己摸索,且找出专属于自己细胞的一套规律，就我个人而言，有如下经验：1 所有待接种的细胞悬液在种板前一定要用吸管混匀。2 按资料记载，24孔板的液体量为1ml，个人也觉得1ml的量足矣。3 接种时，要慢慢加样，且记得轻微旋转枪头，这样做对细胞均匀分布有一定效果。4 接种后最好直接放入培养箱让细胞适应培养板这个新的环境，个人认为没有必要在室温放置一段时间。5 根据细胞的特性，细胞均喜欢聚集在边缘生长，所以我考虑到，你的问题还有可能是接种时的细胞密度不够，导致周边密集，中间稀疏的错觉。你的拌种密度是多少？希望以上意见会对你有所帮助！回复二楼说的是对的，如果还不行，那多半是细胞状态和培养液新鲜程度的问题，重新配置培养液就好了。回复谢谢asunnyhaixia ，我接种时没有计数，就是100ml的培养瓶长满后接种到一个24孔板上，应该细胞密度足够吧？你说“要慢慢加样，且记得轻微旋转枪头”我不是很明白，请指教回复100ml培养瓶长满后是6*10的六次方,如果你是接种24个孔板的话,那么细胞密度会略嫌不足,建议下回调高细胞密度试试.另"要慢慢加样，且记得轻微旋转枪头"的意思就是:加样不能太快,避免细胞在一个加样处聚集,且注意在不同的部位进行加样,即边加边活动枪头,人为使细胞趋于均匀分布,我个人觉得有一定的效果,不知这次我解释清楚没有,望多加交流.回复谢谢asunnyhaixia ,好我明天试试看回复密度确实是个很重要的问题,经验是慢慢积累起来的,呵呵祝你成功回复上面的几位朋友都是经验之人,谢谢帮助,我也得到不少经验啊回复在楼上各位前辈的指导下，我昨天已经成功接种了一板细胞，分布挺均匀的，非常感谢！回复真是宝贵的经验啊，对于我这个初学者如雪中送炭！！回复真是宝贵的经验啊，对于我这个初学者如雪中送炭！！回复不错啊,我也受益匪浅!回复是的，很有用哦回复被我发现archsteed了回复好,谢谢几位高手的指教,这准备做相关实验回复好,谢谢几位高手的指教,正准备做相关实验回复好,谢谢几位高手的指教,正准备做相关实验回复在放入孵箱之前晃晃啦回复一直都有24孔板接种不均的问题困绕，今天看了各位前辈的发言，觉得有启发但是也有疑惑，我接种的是HELA细胞，按照转染要求，密度为1*10的5次方，也是按照算好应接种的细胞总数拿培养液稀释的，在中吹匀后分别加到每孔中。但是细胞严重不均啊，生长16h后，周边为100%，而中央只有10%。我想请教：1：滴加时应该贴着孔壁还是悬空效果会好？ 2：wuliqun能不能把你的成功经验详细分享？回复我想知道其他类型的培养板所需的适宜培养液的量是多少？asunnyhaixia说24孔的1ml足矣。回复我想知道其他类型的培养板所需的适宜培养液的量是多少？asunnyhaixia说24孔的1ml足矣。回复我想知道其他类型的培养板所需的适宜培养液的量是多少？asunnyhaixia说24孔的1ml足矣。回复美人注册 : 一般来说，不同培养板根据其底面积不同，获得的细胞数量不同，要求加培养液的量也不一样：96孔板可加培养液量为0.1ml 24 ----1.0ml 12 -----2.0ml 6 ------2.5ml 4 ------5ml回复hehe,我也受益匪浅!回复收获颇丰！！！！回复wuliqun : 你所遇到的情况我以前也遇到过，除了以上朋友的机电经验外，我另再说一下我的做法。我是在计数完细胞后，根据自己要接种的密度，进行计算后，直接将所需的细胞悬液量移入24孔板，然后再加培养基到1ml，将板上下左右稍微晃动以使均匀，可很大程度地避免周围多中间稍细胞的情况，你不妨试一下回复最近一直纳闷为什么培养板中的细胞为什么老是集中在边缘，看了以上朋友的经验，恍然大悟，按照上面的做法，效果不错，多谢各位拉！回复有收获！最近正在作这方面的东西，谢谢各位！回复周围细胞密集，中间细胞稀少这种情况一般是种板时培养液过少,液面总是呈一凹面,如果液面过低,孔中间就基本上没什么细胞,所以种板时一定不能吝啬培养液,待贴壁后可以用比较少量的培养液处理周围细胞稀少，中间细胞密集这种情况一般是种板后过于晃动,特别是旋转着晃动.有人才用十字方向的晃动方法使细胞分散均匀.但我个人认为,将细胞加入孔后,用枪或充分吹打混匀后就不用,也不能再晃动,甚至拿着孔板走路带来的震动都会让细胞往中间集中.当然,无论是哪种情况,首先都需要保证细胞在种板时时均匀分布的,即种板时的细胞悬液一定要混匀他说的对回复诸位朋友不知道还来不来看这个帖子了，我是个新手，培养的是悬浮生长的细胞，也是用24孔板，也是细胞生长分布不均，但是我的情况是：加液多了（2ml），中央细胞少，边缘细胞多；加液正常时（1ml），中央细胞多，周围细胞少。希望有朋友能给些建议。回复谢谢你们的经验，很受用，今晚刚做，深有体会回复诸位朋友不知道还来不来看这个帖子了，我是个新手，培养的是悬浮生长的细胞，也是用24孔板，也是细胞生长分布不均，但是我的情况是：加液多了（2ml），中央细胞少，边缘细胞多；加液正常时（1ml），中央细胞多，周围细胞少。希望有朋友能给些建议。细胞密度小了 混匀做的不够
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拍照搜题，秒出答案
下面是试管婴儿培育过程示意图．下列有关叙述，正确的是（　　）A．过程①中可通过注射性激素增加排卵数量B．过程②在培养细胞的培养液中就可以完成C．过程③的培养液中一般不需要
下面是试管婴儿培育过程示意图．下列有关叙述，正确的是（　　）A．过程①中可通过注射性激素增加排卵数量B．过程②在培养细胞的培养液中就可以完成C．过程③的培养液中一般不需要添加动物血清D．过程④成功的条件之一是受体对供体胚胎没有排斥反应
A、注射促性腺激素能促进超数排卵，增加排卵数量，A错误；B、在完成过程②之前，需要将采集的精子放在人工合成的获能溶液中培养一段时间，完成精子的获能．获能的精子和培养成熟的卵子一般情况下在获能溶液或专用的受精溶液中完成受精，B错误；C、过程③培养受精卵的培养液中应该添加动物血清，C错误；D、过程④成功的条件之一是受受体对移入子宫的外来胚胎不发生免疫排斥反应，这为胚胎在受体的存活提供了可能，D正确．故选：D．
本题考点：
胚胎移植；试管婴儿及其意义．
问题解析：
试管婴儿是指人的卵细胞和精子在体外完成受精作用，发育到早期胚胎的一定阶段，再移入到母体子宫内继续发育到足月诞生的婴儿，由于受精过程和早期胚胎发育通常在试管中完成，所以叫试管婴儿．试管婴儿只是实现了在体外的受精过程，精子和卵细胞分别来自父母双方，因此属于有性生殖，而动物克隆则是遗传物质几乎全部来自提供细胞核的一方，因此试管婴儿技术属于有性生殖，而动物克隆则属于无性生殖．克隆形成试验的问题的试验是关于放疗增敏的,可实验室没人做过这方面的试验,没办法,有个师姐建议我在丁香园向大家求教,我想做克隆形成试验,我看了一些资料,根据放疗剂量 不同,每个培_百度作业帮
拍照搜题，秒出答案
克隆形成试验的问题的试验是关于放疗增敏的,可实验室没人做过这方面的试验,没办法,有个师姐建议我在丁香园向大家求教,我想做克隆形成试验,我看了一些资料,根据放疗剂量 不同,每个培
克隆形成试验的问题的试验是关于放疗增敏的,可实验室没人做过这方面的试验,没办法,有个师姐建议我在丁香园向大家求教,我想做克隆形成试验,我看了一些资料,根据放疗剂量 不同,每个培养皿接种的细胞数不一样,我觉得用培养皿污染的可能性很大,所以想用6孔板,如果放疗剂量为2Gy 4Gy 6Gy 8Gy
10Gy,那么每孔应该接种多少细胞啊,我看了一篇文章,作者是先将细胞接种到100mm培养皿,24小时后加药,再作用24小时,然后拿去放疗,之后将 细胞消化,台盼兰染色,计数活细胞,然后再接种到60mm培养皿,我觉得每消化一次就是对细胞的损伤,可不可以接种前就计数活细胞,放疗后直接放在孵箱培 养,这样的误差明显吗?另外,我想问问在此计数活细胞的目的是什么?
博凌科为做克隆形成实验首先需要在平皿或孔板中接种相同数量的处理过的细胞,所以需要计数细胞后再种于平皿或孔板中.如果在放疗之前就接种细胞,则经过放疗后,就 不能保证成活的细胞数量是相同的,因而在计算克隆形成率时分母则不一致.而计数活细胞的目的是为了将经过放疗后已经死亡的细胞过滤掉,只计数活细胞,将活 细胞种于平皿或孔板中.经过大概两周的时间,观察细胞的克隆形成情况,克隆形成超过50个的计为一个克隆,计数不同处理的细胞可克隆形成个数,从而得到不 同放疗剂量对细胞的影响程度.