猪细小病毒疫苗研究进展
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自1966年发现和证实猪细小病毒（porcine parvovirus，ppv）的存在及致病性以来，国内外学者对其进行了广泛深入的研究，发现其为单链线状dna病毒，对外界...
　　自1966年发现和证实猪细小病毒（porcine parvovirus，ppv）的存在及致病性以来，国内外学者对其进行了广泛深入的研究，发现其为单链线状dna病毒，对外界理化因素具有很强的抵抗力，主要引起怀孕母猪流产，产死胎，胎儿木乃伊化等，在世界范围内广泛分布，给养猪业造成了巨大的经济损失。同其它许多病毒病的防制一样，该病也主要以免疫预防为主，由于ppv血清型单一及其高免疫原性，使得疫苗接种成为控制ppv感染的一种行之有效的方法，本文就其疫苗研究综述如下；　　1 弱毒疫苗&& & 最早发现和应用于临床的是ppvnadl-2弱毒株，该毒株是将ppv强毒在实验室利用细胞培养连续传代50次以上致弱的，分子生物学研究证实，该毒株的基因组比强毒株ppvnadl-8在vp2基因上少300bp。临床实验证实，血清学阴性的怀孕母猪口服或鼻内接种nadl－2株，尽管有病毒血症存在，却不引起胎儿感染；若将该毒株经子宫内接种，可引起胎儿感染，从而导致繁殖障碍。日本学者fujisakl等将ppv野毒在猪肾细胞上低温（30℃）连续传54代，产生了ht变异株，该毒株接种猪后不产生病毒血症，但能诱导产生高滴度的抗体和较强的免疫力。在此基础上，akihiro等将ht株在猪肾细胞上培养并用紫外线照射后传代，获得了安全性更好的ht-sk-c株，利用该毒株生产的弱毒疫苗已在日本商品化。我国学者对ppv弱毒苗也进行了研究，蒋玉雯等从广西初产母猪所产死胎脏器中，分离出一株ppv自然弱毒株。用该毒株接种ppvhi抗体阴性的4月龄猪和怀孕14～23d的后备母猪，结果不产生病毒血症，母猪分娩正常，所产小猪吃奶前hi抗体阴性。另外，免疫的怀孕母猪用强毒株攻击后49d剖杀，胎儿发育正常，胎心采血hi抗体阴性，取胎儿脏器进行组织培养也未分离出病毒，而对照猪攻毒后产生了病毒血症并导致繁殖障碍，从胎儿脏器中分离出ppv。尽管已有多株弱毒疫苗在临床上应用，但是由于ppv强毒株的大量存在，人们对病毒重组及弱毒返强的担心一直使弱毒苗的应用受到一定限制。　　2 灭活疫苗　　2.1 单价灭活疫苗 自1976年国外就有关于ppv灭活疫苗的研究报道，并于80年代在美国、澳大利亚、法国等国家普遍应用。在我国，潘雪珠等研制成功ppv灭活疫苗之后，韩孝成等、肖驰等、邬捷等、吕建强等也先后研制出ppv灭活疫苗。ppv灭活疫苗的研制中，应用的灭活剂有福尔马林、β-丙内酯（β-pl）、aei（n-乙酰乙烯亚胺）以及bei（二乙烯亚胺）等。fujisaki用福尔马林灭活病毒制成的疫苗，免疫动物诱导产生了较高的抗体滴度，但保护效果不理想；潘雪珠比较了福尔马林和aei的灭活效果，证实aei优于福尔马林；joo等用β-丙内酯灭活的疫苗，可使猪产生的抗体至少持续4个月以上。免疫佐剂是影响ppv灭活疫苗效果的重要因素，moliter等比较了13种不同佐剂用于ppv灭活疫苗的效果，结果发现50％氢氧化铝胶，顺丁烯乙酰（ema）、cp-20961（avridin），油水乳剂及dimethyl-dioctadecyl-ammoniumbromide（dda）作佐剂的疫苗，均诱导猪产生了高滴度的抗体，而用油佐剂、sds、l-121、氢氧化铝和油乳剂混合物、sds和氢氧化铝混合物作佐剂的疫苗产生的抗体滴度均较低。目前在ppv灭活苗的制备中，经常采用的佐剂是氢氧化铝和油水乳剂。　　2.2 灭活二联疫苗 prv，ppv和jev病均是引起母猪繁殖障碍的主要疾病，研制出灭活多联疫苗可以简化免疫程序，降低临床应激反应，适合规模化养猪业的发展趋势。mengeling等将通过细胞培养增殖的ppv和prv，用aei在37℃灭活后混合，加入10％的al（oh）3制成灭活二联疫苗用于免疫预防试验。16头后备母猪进行两次免疫，间隔期为2周，8头母猪在妊娠后9周用prv攻击，8头母猪在妊娠后6周用ppv攻击，然后分别在第13周和12周宰杀，观察保护情况。结果发现，16头母猪均未发生繁殖障碍，从胎儿体内未检出prv和ppv。对免疫母猪的血清学检测结果证实，经二次免疫后，母猪的prv中和抗体和ppvhi抗体滴度，与采用单苗免疫的抗体水平相当或稍高，从而说明prv-ppv灭活二联疫苗具有良好的免疫保护作用。井出诚弥等曾用ppv和jev二种病毒的弱毒疫苗混合后免疫母猪，产生的ppv和jev抗体水平分别与相应单苗的相同。国内邬捷等用ppv灭活苗与jev灭活苗混合或同时免疫后备母猪均取得了满意的效果。姜天童等利用幼龄胎猪生产ppv、利用小鼠增殖jev后，分别灭活制成灭活二联疫苗，通过二联苗和单联苗比较试验显示，二联苗与两种单苗免疫猪产生的ppv和jev抗体水平无显着差异。以上试验均证实两种病毒抗原同时刺激机体没有相互干扰作用。　　3 ppv疫苗的免疫程序&& & 在早期的研究报告中，ppv疫苗的免疫均为间隔2～3周二次注射，随着疫苗生产工艺的改进，许多学者发现一次免疫注射也能达到良好的效果，免疫后的后备母猪在妊娠40d时用强毒攻击，可以获得完全保护。此外，edwards等认为ppv疫苗只能用于没有母源抗体的猪，因为在田间条件下母源抗体可能在不同程度上干扰疫苗的效果。paul等发现猪群在接种ppv灭活苗时，母源抗体水平低的猪与血清学阴性猪的免疫应答完全一样，而中等水平的母源抗体对疫苗免疫有轻微干扰作用，高效价抗体对疫苗有明显干扰作用。吕建强等进行了ppv母源抗体对灭活疫苗免疫效果影响的研究，结果证实不论母源抗体水平高低均不会明显抑制疫苗的主动免疫反应，但是具有低效价母源抗体猪的主动免疫抗体反应规律，与具有高效价母源抗体猪的主动免疫抗体反应规律不同。在母源抗体滴度大于1c 149.5时，灭活疫苗接种后抗体水平先降低然后上升，升幅只有1～3倍；而母源抗体小于1: 25.6时，主动免疫抗体持续上升，母源抗体阴性的猪抗体增幅最大。根据ppv的流行病学特点，仔猪吃奶后2～3d即可在血液中检测到母源抗体，并于8一14d达到高峰，母源抗体可持续20～24周，因此ppv疫苗的免疫接种时间应选择在20周左右。　　4新型疫苗展望&& & 尽管ppv的弱毒苗和灭活苗在猪细小病毒病的预防控制中起到了十分重要的作用，但是各种疫苗均有不同程度的缺陷和不足，如弱毒疫苗发生重组及毒力返强的潜在威胁，以及灭活疫苗免疫效果不稳定等。因此，寻找和发展更为安全有效的疫苗一直是猪细小病毒病免疫预防研究的主题。　　4.1 基因工程亚单位疫苗 martinez等将ppvvp2基因克隆到杆状病毒表达系统中，并成功地在昆虫细胞中高效表达，表达的vp2多肽能自我装配成类病毒粒子（virus-like particles，vlps），用其免疫母猪能诱导产生免疫应答。尽管未见有关该种疫苗进一步研究和应用的报导，但是vp2基因在体外表达的蛋白能自我包装成类病毒粒子的特性，为重组多价亚单位疫苗的研究打下了基础。　　4.2 基因工程多价亚单位疫苗 sedlik等将ppvvp：和包含淋巴细胞脉络丛脑炎病毒（lcmv）的118-132位氨基酸的抗原决定簇区相连，然后克隆于杆状病毒表达载体pacym，转染表达ppv：vp2-lcmv蛋白，利用该重组蛋白免疫鼠可以诱导强烈的ctl反应，在体内持续时间长达9个月，并可抵抗致死量的lcmv攻击。之后，sedlik又将lcmv的cd8+t细胞抗原决定簇多肽共价结合于l／1m的脂质微球上，与上述表达的ppv：vp2-lcmv蛋白一起进行了免疫小鼠的比较，结果发现二者都能诱导产生很强的cd8+t细胞反应。但是ppv：vp2-lcmv携带的抗原量比脂质体微球少100倍时，诱导的ctl活性仍比脂质体微球诱导的ctl活性高6倍，并且只有ppv：vp2-lcmv免疫的小鼠能抵抗致死量的lcmv的攻击。richard等用ppvvp2共价结合乙肝病毒hbsag的抗原决定簇区多肽，然后免疫小鼠诱导产生了很强的针对插入的hbsa~决定簇的t细胞反应，并能抵抗乙肝病毒的致死性攻击。这些结果均说明ppvvp2类病毒粒子，作为一种抗原的转运载体具有很大的潜在价值，并为进行多价重组疫苗的研究创造了良好的条件。 prv和ppv在临床上经常混合感染的现象已有报导，因此研制出。这二种病毒的重组疫苗对生产实践也具有重要意义。prv属于疱疹病毒科。疱疹病毒亚科的猪疱疹病毒i型，该病毒基因组是双链线状的dna，大小约为150kbp，含有多个可缺失的非必需基因，插入外源基因容量可达20kbp，易于进行基因操作，因此具有作为病毒载体的必要条件。迄今为止，国内外用prv作基因表达载体已成功表达了10多种外源目的基因。如zijl等最早实现了病原保护性抗原基因在伪狂犬病毒中的表达，他们将猪瘟病毒（hcv）的囊膜蛋白基因el插入到gg启动子的下游，构建了几株表达el的重组伪狂犬病毒；将这些重组病毒进行动物试验，结果接种重组病毒的猪均能产生对hcv、prv的高滴度中和抗体，并可保护猪免受prv、hcv的强毒攻击。国内，王家富等构建了携带猪瘟病毒e2基因的重组伪狂犬病毒。但是上述研究所用载体均为prv弱毒株，人们对其安全性仍有担心。为些，我们实验室近年来成功地研制出prv的tk-／8g-／lacz+疫苗株，该毒株缺失了prv的毒力基因（tk），并有lacz+标志基因作为筛选标志，以供重组筛选，因而成为更为理想的重组病毒载体。鉴于ppvvp2基因的良好免疫原性，将其插入到prv载体中，有望研制出理想的ppv--prv二价重组基因工程疫苗。　　4.3 基因疫苗 基因免疫又称核酸免疫，是由wolff和feigner于1990年偶然发现的，直接将编码有目的蛋白基因和表达调控序列的dna或rna注射到动物机体内，利用机体的转录和翻译系统，合成目的蛋白质，刺激机体产生特异性的体液免疫和细胞免疫应答。这种能够在体内表达外源蛋白，刺激机体产生免疫应答的核酸称为核酸疫苗，包括dna和rna疫苗。由于基因疫苗具有易于构建和改造，规模化生产成本低廉，具有良好的热稳定性、可诱导机体产生全面的免疫应答，故被认为是继减毒、灭活疫苗和基因工程亚单位疫苗之后的第三代疫苗，并被称作是“疫苗的第三次革命。在1994年的世界卫生组织会议上，与会专家一致认为核酸疫苗将成为疾病防治中的又一个重要手段，特别是它将在一种疫苗预防多种疾病方面发挥作用。尽管对核酸疫苗进行了理论和应用方面的详细探讨，但是其作用机理目前尚未阐明。理论上认为，迄今所有用于主动免疫的第一、二代疫苗都可完善成效果更加理想的核酸疫苗。赵俊龙等进行了有关ppv核酸疫苗的研究，动物试验初步表明，以ppv结构基因vpl和vp2分别构建的核酸疫苗，均能诱导产生较高水平的体液免疫和细胞免疫，比常规灭活疫苗产生的高。核酸疫苗的生产简便、成本低廉，也预示着其具有理想的应用前景。　　4.4 转基因植物可饲（食）疫苗 转基因植物可饲（食）疫苗是在二十世纪八十年代，利用植物基因工程技术创造转基因植物的基础上发展起来的。首先进行转基因植物可饲疫苗研究的是curtiss和cardineau，他们以专利的形式发表了他们的第一篇报告。mason等报道了在转基因植物中表达乙肝表面抗原，提出转基因植物疫苗的概念，他们在研究hbsag在转基因植物中表达时，发现外源基因在转基因植物中的转录和翻译没有受到限制，不仅可以正常编码蛋白，而且可以组装形成类病毒颗粒。正是基于这一点，我们认为有望开发出ppv转基因植物可饲疫苗，因为ppv的vp：基因表达后能自我形成类病毒粒子，这对保持其免疫原性是非常重要的；另外，vp2基因表达的类病毒粒子可以作为其它抗原的转运载体，这为开发多价的转基因植物疫苗提供了条件。
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猪细小病毒病--猪圆环病毒病二联灭活疫苗的研究
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3秒自动关闭窗口母猪在喂阿莫西林的同时，能注射细小病毒和伪狂犬菌苗吗?_百度知道
母猪在喂阿莫西林的同时，能注射细小病毒和伪狂犬菌苗吗?
我有更好的答案
阿莫西林对免疫无不良影响，如果是人用药物，可以接种疫苗如果是兽用阿莫西林粉剂的话，里边可能会加入某些对免疫有影响的其它药物，所以不建议在同时接种疫苗
两者不能够同时进行。
最好不要同时注射，
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猪瘟、猪细小病毒和猪伪狂犬病毒混合感染的诊治
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本病曾称为“神秘猪病”、“新猪病”、“猪流行性流产和呼吸综合症”、“”、“蓝耳病”、“猪瘟疫”等，我国将其列为二类。
病毒的起源
Peter G.W. Plagemann 推测说，该病毒是由鼠的动脉炎病毒（乳酸脱氢酶增高病毒，lactate dehydrogenase-elevating virus）通过伤口感染了中欧的野猪（Wild boars ）后产生的变异病毒，这些野猪曾作为狩猎使用被引进美国，被引进的野猪就作为中间宿主将病毒传播至北卡罗来纳州，感染的时间大约发生在1912 年。这些病毒在这两大洲内独立变异和进化，大约经过七十年左右的时间，通过家猪和野猪的接触，病毒进入家猪（domestic pigs）群中，形成了后来的两大独立的蓝耳病病毒原型（即通常所说的蓝耳病病毒的两种基本的基因型）：欧洲型和美洲型。欧洲和北美在 年间从野猪体内检测到蓝耳病病毒的抗体也证实了这一点。
本病的病原又名莱利斯塔病毒（Lelysted virus)为套式病毒目(Nidovirales)、动脉炎病毒科（Arteriviridac）、动脉炎病毒属（Arterivirirus）的繁殖与呼吸综合征病毒,呈卵圆形，有囊膜，直径在40～60nm之间，表面有约5nm大小的突起。核衣壳呈二十面体对称，直径为25～30nm。基因组为单股正链RNA病毒，分子量约1.5×10^6。组长约15kb，不分节段的RNA，含有5'端非编码区（Untranslated region,UTR)、10个开放阅读框架（ORF1a、ORF2a、ORF1b、ORF2b、ORF3-7、ORF5a)编码病毒结构蛋白（GP2、GP3、GP4、GP5、M、N)和3'端UTR,其中ORF7编码核衣壳蛋白(N)、ORF5编码病毒的糖化囊膜蛋白（GP5（E））是最易发生变异的蛋白基因之一， 基因之间有部分重叠。无血凝活性，不凝集哺乳动物、禽类和人类红细胞。
环境抵抗力
该病毒对外界环境抵抗力相对较弱，病毒在氯化铯中的浮密度为1.13～1.19g/mL，在蔗糖梯度中的浮密度为1.18～1.23g/mL。病毒的稳定性受pH和温度的影响比较大。pH6.0时稳定，在pH小于5或大于7的条件下，其感染力降低95%以上。在pH7.5的培养液中可于-20℃和-70℃长期保存。在4℃下仅存活一个月，37℃存活18h，56℃存活15min以内，干燥可很快使病毒失活。对有机溶剂十分敏感，经氯仿处理后，其感染性可下降99.99%。但在空气中可以保持3周左右的感染力，对常用的化学消毒剂的抵抗力不强。
病毒的变异
变异是RNA 病毒的一个非常明显的特征。PRRSV基因组的变异是本病难以控制的重要原因之一。根据基因组的序列差异分为两个型，即以ATCCVR-2332（VR株）毒株为代表的美洲型（简称B亚群）和以Lelystadvirus(LV株)为代表的欧洲型（简称A亚群）。毒株之间存在显著的抗原差异性，两者只有很少的交叉反应。A亚群：广泛的基因组变异，B亚群：较为保守。而且两个毒株的差异越大，两者之间不相容的程度就越高。我国的猪繁殖与呼吸综合征病毒分离毒株均属美洲型，迄今还没有发现欧洲型毒株，同时我国的分离毒株也存在变异现象，现已发现有缺失变异毒株的存在。
病毒的感染
PRRSV的主要靶细胞是单核细胞-巨噬细胞系统如肺泡巨噬细胞（macrophages，PAM）、肺泡的二型肺细胞（pneumocytes type II）、外周单核细胞、生精小管（seminiferous tubules ）的上皮生殖细胞（epithelial germ cells） 和间质内的巨噬细胞，卵巢卵泡中的巨噬细胞。其中猪肺泡巨噬细胞最为敏感。
5.2.增殖过程
通过受体介导的胞吞作用进入肺泡巨噬细胞，这牵涉到核受体的变异，包括唾液酸粘附素、硫酸肝素、CD163、CD151。目前认为病毒的初级复制部位是鼻黏膜或上呼吸道系统中的巨噬细胞，然后通过血液循环扩散至其他器官，并在其中的单核巨噬细胞系统内增殖。
5.3.增殖特点
有严格的宿主专一性，对巨噬细胞有专嗜性。病毒的增殖具有抗体依赖性增强（ADE）作用，即在亚中和抗体水平存在的情况下，在细胞上的复制能力反而得到增强。
本病是一种高度接触性传染病，呈地方流行性。PRRSV只感染猪，各种品种、不同年龄和用途的猪均可感染，但以妊娠母猪和1月龄以内的仔猪最易感。患病猪和带毒猪是本病的重要传染源。主要传播途径是接触感染、和精液传播，也可通过胎盘垂直传播。易感猪可经口、、肌肉、腹腔、静脉及子宫内接种等多种途径而感染病毒，猪感染病毒后2～14周均可通过接触将病毒传播给其他易感猪。从病猪的鼻腔、粪便及尿中均可检测到病毒。易感猪与带毒猪直接接触或与污染有PRRSV的运输工具、器械接触均可受到感染。感染猪的流动也是本病的重要传播方式。
是PRRS流行病学的重要特征，PRRSV可在感染猪体内存在很长时间。
PRRSV可通过血液循环穿过胎盘使胎猪受到感染，从而引起妊娠后期母猪流产等繁殖障碍。
本病的潜伏期差异较大，引入感染后易感猪群发生PRRS的潜伏期，最短为3天，最长为37天。本病的临诊症状变化很大，且受病毒株、免疫状态及饲养管理因素和环境条件的影响。低毒株可引起猪群无临诊症状的流行，而强毒株能够引起严重的临诊疾病，临诊上可分为急性型、慢性型、亚临诊型等。
发病母猪主要表现为精神沉郁、食欲减少或废绝、发热，出现不同程度的呼吸困难，妊娠后期（105～107天），母猪发生流产（图1-1）、早产、（图1-2）、木乃伊胎（图1-3）、弱仔。母猪流产率可达50%～70%，死产率可达35%以上，木乃伊可达25%，部分新生表现呼吸困难，及轻瘫等症状，产后1周内死亡率明显增高（40%～80%）。少数母猪表现为产后无乳、胎衣停滞及增多。
1月龄仔猪表现出典型的呼吸道症状，呼吸困难，有时呈腹式呼吸，食欲减退或废绝，体温升高到40℃以上，腹泻。被毛粗乱，共济失调，渐进性消瘦，。少部分仔猪可见耳部、体表皮肤发紫（图1-4 1-5），断奶前仔猪死亡率可达80%～100%，断奶后仔猪的增重降低，日增重可下降50%～75%，死亡率升高（10%～25%）。耐过猪生长缓慢，易继发其他疾病。
生长猪和育肥猪表现出轻度的临诊症状，有不同程序的呼吸系统症状，少数病例可表现出咳嗽及双耳背面、边缘、腹部及尾部皮肤出现深紫色。感染猪易发生继发感染，并出现相应症状。
种公猪的发病率较低，主要表现为一般性的临诊症状，但公猪的精液品质下降，精子出现畸形，精液可带毒。
这是在规模化猪场PRRS表现的主要形式。主要表现为猪群的生产性能下降，生长缓慢，母猪群的繁殖性能下降，猪群免疫功能下降，易继发感染其他细菌性和病毒性疾病。猪群的（如、、、）发病率上升。
感染猪不发病，表现为PRRSV的，猪群的血清学抗体阳性，阳性率一般在10%～88%。
无继发感染的病例除有淋巴结轻度或中度水肿外，肉眼变化不明显，呼吸道的病理变化为温和到严重的间质型，有时有卡他性肺炎，若有继发感染，则可出现相应的病理变化，如、、及等。
病理组织学
：PRRSV感染引起的繁殖障碍所产仔猪和胎儿很少有特征性病变，PRRS致死的胎儿病变是子宫内无菌性自溶的结果，没出现特异性；流产的胎儿血管周围出现以巨噬细胞和淋巴细胞浸润为特征的动脉炎、心肌炎和。发生出血性扩张和坏死性动脉炎。
生长猪较成年猪更常见特征性组织性病理变化，肺的组织学病变具有普遍性，有诊断意义。单纯的PRRS感染引起的肺炎以伴随正常的呼吸道上皮为特征。其特点为肺泡间隔增厚，单核细胞浸润及Ⅱ型上皮细胞增生，肺泡腔内有坏死细胞碎片。
PRRS和细菌、病毒混合感染时，病变应和并发感染的细菌/病毒的不同而有所变化，合并感染细菌性常引起复杂的PRRS肺炎，间质性肺炎常混合化脓性纤维素性支气管肺炎或被化脓性纤维素性支气管肺炎所掩盖。有些感染病例还可见胸膜炎。
鼻甲部黏膜的病变是PRRS感染后期的特征，其上皮细胞纤毛脱落，上皮内空泡形成和黏膜下层、巨噬细胞和浆细胞浸润。淋巴结、胸腺和脾脏的组织病理学变化，以发生肥大和增生、中心坏死、内有多核巨细胞浸润为特征，病早期可见脾脏白髓、扁桃体滤泡淋巴细胞坏死，后期脾核淋巴结细胞增生；另外PRRS感染引起的血管、神经系统、生殖系统的病变也主要表现为淋巴、、的增生和浸润。
本病应与其它繁殖障碍和呼吸道疾病进行鉴别诊断，如应与、、、、、猪呼吸道冠状病毒病、猪脑、猪血凝性脊髓炎以及其他进行区分。
1、坚持自繁自养的原则，建立稳定的种猪群，不轻易引种。如必须引种，首先要搞清所引猪场的疫情，此外，还应进行血清学检测，阴性猪方引入，坚决禁止引入带毒猪。引入后必须建立适当的，做好监测工作，一般需隔离检疫4～5周，健康者方可混群饲养。
2、规模化猪场要彻底实现全进全出，至少要做到产房和保育两个阶段的全进全出。
3、建立健全规模化猪场的生物安全体系，定期对猪舍和环境进行消毒，保持猪舍、饲养管理用具及环境的清洁卫生，一方面可防止外面疫病的传人，另一方面通过严格的卫生消毒措施把猪场内的病原微生物的污染降低到最低限，可以最大限度地控制和降低PRRSV感染猪群的发生率和继发感染机会。
4、做好猪群饲养管理。在病毒感染猪场，应做好各阶段猪群的饲养管理，用好料，保证猪群的营养水平，以提高猪群对其他病原微生物的抵抗力，从而降低继发感染的发生率和由此造成的损失。
5、做好其他疫病的，控制好其他疫病，特别是猪瘟、猪伪狂犬和的控制。在猪繁殖一呼吸综合征病毒感染猪场，应尽最大努力把控制好，否则会造成猪群的高死亡率；同时应竭力推行猪气喘病的免疫接种，以减轻支原体对的侵害，从而提高猪群肺脏对呼吸道病原体感染的抵抗力。
6、定期对猪群中猪繁殖与呼吸综合征病毒的感染状况进行监测，以了解该病在猪场的活动状况。一般而言，每季度监测一次，对各个阶段的猪群进行采样进行抗体监测，如果4次监测抗体阳性率没有显著变化，则表明该病在猪场是稳定的，相反，如果在某一季度抗体阳性率有所升高，说明猪场在管理与卫生消毒方面存在问题。应加以改正。
7、对发病猪场要严密封锁；对发病猪场周围的猪场也要采取一定的措施，避免疾病扩散，对流产的胎衣、死胎及死猪都做好无害处理，产房彻底消毒；隔离病猪，对症治疗，改善饲喂条件等。
8、关于，总的来说如今尚无十分有效的免疫防制措施，如今国内外已推出商品化的PRRS和灭活苗，国内也有正式批准的灭活疫苗。然而，PRRS弱毒疫苗的毒力增强的现象和安全性问题日益引起人们的担忧。国内外有使用弱毒疫苗而在猪群中引起多起PRRS的暴发，因此，应慎重使用活疫苗。虽然灭活疫苗的免疫效力有限或不确定，但从安全性角度来讲是没有问题的，因此在感染猪场，可以考虑给母猪接种灭活疫苗。
猪蓝耳病的预防措施：
A.平时做好药物保健，保健方案中建议不要使用氯霉素类药物（氟苯尼考），慎用磺胺药物。药物治疗方面，要考虑应激、毒副作用、和诸多并发感染，预防猪蓝耳病注射疫苗进行预防。
B.平时要经常消毒，消毒要使用多种类型的消毒药进行更换使用。（如卤素类、酸类、醛类、双季铵盐和双胍类、酚类和碱类消毒药）加强对预防猪蓝耳病是很好一种的方法。
C.不要胡乱接种疫苗，猪场接种过多的疫苗，对猪群健康稳定是有绝对性的影响。（如:自家苗、PRRS弱毒苗、PR弱毒苗、猪瘟脾淋苗、还有进口的多联苗等）想依靠疫苗来预防猪高热病那是不可能的，最终是越打越乱，最后容易机体免疫失调。
D.搭配合理的营养，增强机体的抗病能力。质量差的原料最好不要使用，避免导致，免疫力下降，诱发猪高热病。
E.夏季注意降温通风，猪场卫生干净。要求对猪群冲水洗浴来防止热应激、中暑等可以诱发猪蓝耳病的环境因素。
F.控制猪蓝耳病的稳妥高效办法:用复方花青素+牛磺酸+阿司匹林/拌饲料,临床治疗效果很好.
猪场爆发猪猪的控制措施：
A.饲料中添加药物拌料，用复方花青素++强力霉素（具体用量根据实际情况和技术人员指导说明）。
处方说明：
1复方花青素纯中药复合提取物 产品中主要含花青素、绿原酸、黄酮、、皂甙等成分。本产品通过促进机体T细胞介导的与NK细胞的活性，从而提高机体对病毒易感细胞的免疫功能。临床试验观察：有明显的调理猪群机体健康的功效，并且能控制病毒复制和病毒净化等作用。病毒净化效果奇佳。
2.高热不退的病猪治疗：复方花青素+牛磺酸+阿司匹林/干净水中饮用，连续用3-5天。尽量不要给猪群注射针剂，防止应激导致。
3.加强消毒：用含酸类消毒药（如过氧乙酸）每天进行消毒，坚持使用一段时间，后期改换其它类型消毒药消毒。
4.猪群疫病稳定后.建议全群接种一次猪瘟疫苗，为避免接种应激，可以分次接种注射。（如接种5头份苗，先接种2头份，过3天在接种3头份）。
5.猪群稳定后，要求做好药物保健，加强营养，经常消毒（每2-3天就一次），不要乱接种疫苗。
猪蓝耳病舍内的主要传播途径是接触感染、和精液传播，而舍外病原的侵袭多为空气传播，因此切断空气传播渠道以及在舍内采取降低浓度以及物理灭活空气微生物等预防措施是预防本病发生的关键。实现以上防疫目标可采用空间电场自动防疫方法或建立。
物理预防通常是指衍生的畜禽舍空间电场自动防疫方法，该方法是在畜禽舍动物上方的布置一组空间电场发生电极线，该电极线与地面组成一个“无形的防疫电窗”，向电极线充以直流高电压，则空间电场就在电极线与地面之间建立起来了，在这个空间电场环境中，微生物气溶胶浓度以及粉尘含量会降低到很低的状态，而且带有高电压的电极线会电离空气产生臭氧、硝酸气用以灭杀病毒等空气微生物和物体表面的微生物，同时会分解粪便发酵产生的恶臭气体。同样，在粪道设置空间电场也具有这样的防疫和空气净化能力。
空间电场对空气微生物浓度的降低以及病毒的灭杀是建立微生物气溶胶空间电场疫苗化的基础，也是防疫成功的基础。空间电场的防疫原理与建立空间电场的方法。在猪场使用空气消毒干粉，能起到更加的消毒效果。
猪舍空间电场预防猪蓝耳病、口蹄疫的实例
空间电场防疫措施图解
2007年4月，农业部颁布了《高致病性猪蓝耳病防治技术规范》，开始将高致病性猪蓝耳病纳入国家重大动物疫病政府强制性免疫范围。2009年我国生猪出栏数64,527.1万头，年底存栏数46,983.4万头，饲养量为111,510.5万头。根据《农业部关于印发&2010年国家动物疫病强制免疫计划&的通知》（农医发[2010]1号）及《农业部办公厅关于报送2010年重大动物疫病强制免疫疫苗经费申请报告的通知》（农办医[2010]4号），强制免疫方案按饲养量免疫2次，可以选择适用高致病性猪蓝耳病或高致病性猪蓝耳病。据此测算，我国高致病性猪蓝耳病疫苗的约为22.3亿头份，折合44.6亿毫升，市场空间巨大。
针对高致病性猪蓝耳病的疫苗有灭活苗和活疫苗两种。2008年及以前，国内主要是采用灭活苗进行，从2009年4月底，农业部开始批准了第一批共计4家企业生产高致病性蓝耳病活疫苗（JXA1-R株），活疫苗开始进入试点使用。两种疫苗各有优势，在免疫实践中，往往是针对不同的猪以及疫情情况使用不同的疫苗。根据农业部《2010年国家动物疫病强制免疫计划》，对商品猪和种母猪可选用灭活苗或活疫苗进行免疫，而种公猪选用灭活苗进行免疫。
目前国内高致病性猪蓝耳病灭活苗的定点生产厂家有19 家，高致病性猪蓝耳病活疫苗的定点生产厂家有18家，其中本公司及中牧股份成都药械厂、普莱柯生物工程股份有限公司、广东永顺生物制药有限公司等是为数不多的几家同时获得了农业部指定高致病性猪蓝耳病灭活苗及活疫苗生产资质的厂家。