脱氧核糖核苷三磷酸类成分 hplc分析时加酸吗

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【公告】 HPLC实践技术SOS专区(HPLC问题请在此跟贴发问!)&[精华]
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【求助】我最近想用HPLC来测定锁链素(desmosine)的含量,锁链素的分子量为625,它有个同分异构体是异锁链素,请问各位专家如何用HPLC使锁链素和异锁链素的峰区分开来,非常感谢!
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大家好!我想用HPLC分析药物的含量,请问各位战友配制 标准溶液时,标准品的一系列的浓度是根据什么来配的?哪位战友指点一下,谢谢!
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各位老师:我现在用的是HPLC2010如何梯度洗脱呢??
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请问,我在做表阿霉素血浆的标准曲线时,为什么峰面积与浓度成反比啊
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关于丁香园& 宁心宝胶囊中5种核苷类成分的RP-HPLC定量分析
宁心宝胶囊中5种核苷类成分的RP-HPLC定量分析
摘 要:目的:测定与分析宁心宝胶囊中5种核苷类成分的含量。方法:采用RP-HPLC法,色谱条件:LichrospherC18(250mm×4.6mm,5μm)色谱柱;流动相为甲醇-0.05mol&#
【题 名】宁心宝胶囊中5种核苷类成分的RP-HPLC定量分析
【作 者】肖新月 李远科 张萍 吴秀清 鲁静
【机 构】[1]中国药品生物制品检定所,北京]四川省资阳市食品药品检验所,资阳641300
【刊 名】《药物分析杂志》 2007年第27卷第10期,页
【关键词】宁心宝胶囊 尿嘧啶 尿苷 腺嘌呤 鸟苷 腺苷 RP-HPLC
【文 摘】目的:测定与分析宁心宝胶囊中5种核苷类成分的含量。方法:采用RP-HPLC法,色谱条件:LichrospherC18(250mm×4.6mm,5μm)色谱柱;流动相为甲醇-0.05mol·L^-1磷酸二氢钾溶液(8:92),流速为1.0mL·min^-1;检测波长为260nm;柱温:25℃。结果:尿嘧啶、尿苷、腺嘌呤、鸟苷和腺苷5个成分进样量分别在0.008-0.128μg,0.126-1.900μg,0.008-0.119μg,0.043-0.649μg,0.080-1.212μg范围内呈良好的线性关系,相关系数为0.0,平均回收率(n=9)为95.0%-103.8%;RSD均小于3.0%。结果:利用建立的RP-HPLC方法,测定26个企业生产的68批宁心宝胶囊中尿嘧啶、尿苷、腺嘌呤、鸟苷和腺苷的含量分别为0.01-0.03,0.95-2.15,0.01-0.05,0.61-1.57,0.63-1.57mg·粒^-1。结论:本法灵敏度高,重复性好,提取方法与色谱条件均较简单,能有效鉴别并测定宁心宝胶囊中5种主要核苷类成分的含量。
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宁心宝胶囊,尿嘧啶,尿苷,腺嘌呤,鸟苷,腺苷,RP-HPLC
上一篇:暂无33 ( 1 ) 药物分析杂志 Chin J Pharm Anal 2013 ,
RP - HPLC 法同时测定熟地黄中 5 个核苷类成分的含量 *
1 1 2 3 1 * 张文萌 , 贾玉荣 , 付锦楠 , 张刘强 , 孙立新 *
( 1. 沈阳药科大学, 沈阳 110016 ; 2. 江西省科学院微生物研究所, 南昌 330029 ; 3. 上海中医药大学, 上海 201203 ) 摘要 目的: 建立同时测定熟地黄中次黄嘌呤 、 尿苷、 腺嘌呤、 鸟苷和腺苷 5 个核苷类成分的 RP - HPLC 法。 方法: 采用 Dia16. 0 μg · mL - 1 ( r =
-1 monsil C18 ( 4. 6 mm ? 250 mm, 5 μm ) 色谱柱, 以乙腈 - 0. 04 mol · L 磷酸二氢钾溶液为流动相梯度洗脱, 流速 1. 0 mL ·
min - 1 , 检测波长 254 nm; 柱 温 30 ? 。 结 果: 次 黄 嘌 呤、 尿 苷、 腺 嘌 呤、 鸟 苷 和 腺 苷 浓 度 分 别 在 1. 0 5. 0 0. 9999 ) 、 16. 0 μg·mL 80. 0 μg · mL
( r = 0. 9999 ) 、 1. 0
16. 0 μg · mL
( r = 0. 9997 ) 、 1. 25
20. 0 μg · mL
( r = 0. 9999 ) 、 1. 0
( r = 0. 9999 ) 范围内线性良好。加样回收率为 98. 1%
101. 0% 。 结论: 该方法可以用于熟地黄中次黄嘌呤 、
尿苷、 腺嘌呤、 鸟苷和腺苷的含量测定 。 关键词: 熟地黄; 炮制品; 核苷含量测定; 次黄嘌呤; 尿苷; 腺嘌呤; 鸟苷; 腺苷; 高效液相色谱法 中图分类号: R917 文献标识码: A 文章编号: 0254 - 1793 ( 2013 ) 01 - 0094 - 04
RP - HPLC simultaneous determination of five nucleosides in Radix Rehmanniae Preparata*
* ZHANG Wen - meng1 , JIA Yu - rong1 , FU Jin - nan2 , ZHANG Liu - qiang3 , SUN Li - xin1*
( 1. Shenyang Pharmaceutical University, Shenyang 110016 , China; 2. Institute of Microbiology, Jiangxi Academy of Sciences, Nanchang 330029 , China; 3. Shanghai University of Traditional Chinese Medicine, Shanghai 201203 , China)
Objective: To establish a RP - HPLC method for simultaneously determining five nucleosides( hypoxan-
thine, uridine, adenine, guanosine and adenosine ) in Radix Rehmanniae Preparata. Methods: The Diamonsil C18 ( 4. 6 mm ? 250 mm, 5 μm) column was adopted and diluted with acetonitrile - 0. 04 mol· L - 1 potassium dihydrogen phosphate gradiently at the wavelength of 254 nm. The flow rate was 1. 0 mL·min - 1 and the column temperature was 30 ? . Results: The method was developed with a good linearity within the range of 1. 0 - 16. 0 μg·mL - 1 ( r = 0. 9999 ) , 5. 0 - 80. 0 μg·mL - 1 ( r = 0. 9999 ) , 1. 0 - 16. 0 μg · mL - 1 ( r = 0. 9997 ) , 1. 25 - 20. 0 μg · mL - 1 ( r = 0. 9999 ) and 1. 0 - 16. 0 μg·mL - 1 ( r = 0. 9999 ) for hypoxanthine, uridine, adenine, guanosine and adenosine, respectively. And the average recoveries of the five nucleosides were 98. 1% - 101. 0% . Conclusion: The established method can be used for the quantification of five nucleosides ( hypoxanthine, uridine, adenine, guanosine and adenosine) in Radix Rehmanniae Preparata. Key words: Radix Rehmanniae Preparata; processed product; nucleoside content determination; hypoxanthine; uridine; adenine; guanosine; adenosine; RP - HPLC 中国药典 2010 年版收载的地黄, 为玄参科植物 地黄 ( Rehmannia glutinosa Libosch. ) 的块根。 熟地 黄为地黄的块茎经加工炮制而成, 且清蒸和加黄酒 [1 ] 炖是常用的炮制方法 。 地黄的主要成分有环烯醚萜、 苷类及糖类, 还含 [2 ] 有多种氨基酸、 有机酸及无机元素等 。 根据文献 报道, 鲜地黄在炮制成生地黄和熟地黄过程中 , 所含 成分发生了改变, 其药理活性和临床作用也有很大 。生地黄清热凉血、 养阴生津; 熟地黄具有 滋阴补血、 益精填髓的功能, 主治肝肾阴虚、 腰膝酸 差异 软、 骨蒸潮热、 盗汗遗精 研究主要集中在地黄苷
[3 ] [2 ]
。 目前地黄的质量控制
[6 - 7 ] 、 , 梓醇 熟地黄中主
[4 - 5 ]
辽宁省高校创新团队支持计划( LT2012018 ) Tel: ( 024 )
; E - mail: slx04@ 163. com
* * 通讯作者
33 ( 1 ) 药物分析杂志 Chin J Pharm Anal 2013 ,
[8 ] 5 - 羟甲基糠醛[9 - 10] 等。 近期研究 要有还原糖 、 鸟苷、 腺苷等核苷类成分能够干扰病毒核 发现尿苷、 [11 ] , 酸的合成 通常为中成药抗病毒的活性成分 ; 腺
苷、 腺嘌呤、 鸟苷、 腺苷的对照品适量, 精密称定, 分 50% 1 mL 1 mg 甲醇制成每 约含 的单一对 别加入 照品储备液; 分别精密吸取次黄嘌呤对照品储备液 2. 0 mL、 尿苷对照品储备液 10. 0 mL、 腺嘌呤对照品 鸟苷对照品储备液 2. 5 mL、 腺苷对 储备液 2. 0 mL、 照品储备液 2. 0 mL, 置于同一 100 mL 量瓶中, 用水 稀释至刻度, 摇匀, 配成每 1 mL 约含次黄嘌呤 0. 02 mg、 尿苷 0. 1 mg、 腺嘌呤 0. 02 mg、 鸟苷 0. 025 mg 和 腺苷 0. 02 mg 的混合溶液, 即得。 2. 2 供试品溶液的制备 将熟地黄粉碎成粗粉, 取 1. 0 g, 精密称定, 置 50 mL 平底烧瓶中, 加入 10% 甲 醇 10 mL, 称 定 重 量, 超 声 ( 功 率 250 W, 频 率 40 kHz) 处理 1 h, 再称定重量, 用 10% 的甲醇补足缺失 的重量, 摇匀, 滤过, 取续滤液, 以 0. 45 μm 滤膜过 即得。 滤, 2. 3 色谱条 件 及 系 统 适 用 性 试 验 色 谱 柱: Diamonsil C18 ( 4. 6 mm ? 250 mm, 5 μm ) ; 流动相: 乙腈 ( A) - 0. 04 mol · L - 1 磷酸二氢钾溶液 ( B ) , 梯度洗 0% A; 25 40min, 0% A →1% A; 40 脱( 0 25 min, 60 min, 5% A ) ; 流 速: 1 mL·min ; 检测波长: 254 nm; 柱温: 30 ? ; 进样量: 20 μL。 在上述色谱条件下, 次黄嘌呤、 尿苷、 腺嘌
减慢心律等作用 。 目前熟地 苷还具有降低血压、 黄中 5 个核苷的同时含量测定未见报道 。本文研究 建立了应用 RP - HPLC 测定不同产地熟地黄中次 黄嘌呤、 尿苷、 腺嘌呤、 鸟苷及腺苷含量的方法。 仪器与试药 1. 1 仪器 Waters 2695 高效液相色谱仪: 四元泵, Waters 2487 UV 检 在线脱气, 柱温箱, 自动进样器, 1 Empower 色谱工作站; Sartorius BT 25S 型十万 测器, 分之一分析天平 ( 北 京 赛 多 利 斯 科 学 仪 器 有 限 公 司) ; SB 52000 型超声波清洗器 ( 宁波新芝生物科技 有限公司) 。 试 药 对 照 品 次 黄 嘌 呤 ( 批 号 140661 - 200903 ) 、 尿苷 ( 批号 887 - 200202 ) 、 腺嘌呤 ( 批号 110886 - 200001 ) 、 ( 110879 - 200202 ) 均 腺苷 批号 1. 2 购于中国食品药品检定研究院, 鸟苷购于上海同田 生物技术有限公司; 所有对照品均经 HPLC 检测为 单一成分, 纯度达到 99. 5% 以上。乙腈 ( 默克公司 ) 为色谱纯, 其他为分析纯, 水为娃哈哈纯净水。所用 熟地黄样品购于北京、 上海、 沈阳、 河南、 济南、 南京、 西安、 吉林、 太原、 内蒙古等地, 均经上海中医药大学 崔亚军副教授鉴定。 2 方法与结果 2. 1 混合对照品储备液的制备 取次黄嘌呤、 尿
50 min, 1% A → 5% A; 50
17. 3 、 24. 3 、 呤、 鸟苷、 腺苷的保留时间分别为 12. 5 、 44. 4 、 56. 8 min, 且 各 色 谱 峰 分 离 度 良 好, 均大于 1. 5 ; 理论塔板数按尿苷峰计算不低于 8000 。 色谱 图见图 1 。
混合对照品( A) 及上海熟地黄样品( B) 色谱图 Chromatograms of mixed standard references( A) and Radix Rehmanniae Preparata from Shanghai( B) 2. 尿苷( uridine) 3. 腺嘌呤( adenine) 4. 鸟苷( guanosine) 5. 腺苷( adenosine)
1. 次黄嘌呤( hypoxanthine)
33 ( 1 ) 药物分析杂志 Chin J Pharm Anal 2013 ,
线性关系考察 精密吸取混合对照品储备液 0. 5 、 1. 0 、 2. 0 、 4. 0 、 8. 0 mL, 分别置于 10 mL 量瓶中, 2. 4 加入 50% 甲醇溶解并稀释至刻度, 摇匀, 即得一系 按上述色谱条件进 列不同浓度的混合对照品溶液, 以 样测定。以对照品浓度 X ( μg·mL ) 为横坐标, 峰面积 Y 为纵坐标, 绘 制 标 准 曲 线, 次 黄 嘌 呤、 尿 苷、 腺嘌呤、 鸟苷和腺苷的回归方程分别为: Y = 7. 150 ? 10 4 X + 1. 048 ? 10 3 r = 0. 9999 Y = 4. 026 ? 10 4 X + 4. 552 ? 10 3 Y = 9. 909 ? 10 X - 3. 248 ? 10 Y = 4. 869 ? 10 X - 1. 836 ? 10
4 4 4 4 4 3 -1
稳定性试验 取 1 号熟地黄样品的供试品溶 , 1、 2、 4、 6、 8、 12 h 进样, 测定次黄嘌呤、 液 分别在 0 、 尿苷、 腺嘌呤、 鸟苷、 腺苷的峰面积, 计算 RSD 分别 4. 3% 、 2. 8% 、 1. 2% 、 4. 2% , 表明供试品 为 3. 1% 、 溶液在 12 h 内稳定。
加样回收试验 取已测知含量 ( 次黄嘌呤、 尿 198. 3 、 苷、 腺嘌呤、 鸟苷、 腺苷的含量分别为 22. 24 、
r = 0. 9999 r = 0. 9997 r = 0. 9999 r = 0. 9999
39. 60 、 25. 96 、 77. 12 μg·g - 1 ) 的 1 号熟地黄样品约 0. 5 g 共 9 份, 精密称定, 分别加入相当于样品含有 100% 、 150% 的对照品溶液, 量 50% 、 每个浓度各 3 “ 2. 2 ” 份。按 项下方法制备供试溶液, 在上述色谱 条件下进样测定, 计算加样回收率。 次黄嘌呤高、 中、 低 3 个 浓 度 的 平 均 回 收 率 分 别 为 97. 6% 、 100. 7% 、98. 4% ,RSD 分 别 为 0. 82% 、1. 6% 、 0. 97% ; 尿苷高、 中、 低 3 个浓度的平均回收率分别 100. 9% 、 101. 3% , RSD 分别为 1. 6% 、 为 100. 7% 、 0. 70% 、 0. 15% ; 腺嘌呤高、 、 中 低 3 个浓度的平均回 98. 0% 、 99. 0% , RSD 分 别 为 收率 分 别 为 97. 9% 、 2. 4% 、 2. 0% 、 1. 9% ; 鸟 苷 高 、 中、 低 3 个浓度的平 98. 7% 、 99. 5% , RSD 分 均回收 率 分 别 为 97. 7% 、 1. 0% 、 0. 62% ; 腺 苷 高 、 别为 1. 8% 、 中、 低 3 个浓 度 的 平 均 回 收 率 分 别 为 99. 5% 、100. 6% 、 100. 5% , RSD 分别为 1. 6% 、 0. 80% 、 1. 2% 。 结果 表明该方法准确度良好 。 2. 9 样品的含量测定 取 10 批市售熟地黄样品, “ 2. 2 ” 按 项下方法各制备 3 份供试品溶液, 按上述 色谱条件进样测定峰面积, 标准曲线法计算含量, 结 果见表 1 。
Y = 6. 794 ? 10 X + 3. 404 ? 10
结果表明次黄嘌呤、 尿苷、 腺嘌呤、 鸟苷和腺苷进样 5. 0 80. 0 、 1. 0 16. 0 、 浓度 分 别 在 1. 0 16. 0 、 1. 25 20. 0 、 1. 0 16. 0 μg · mL
范围内线性关系
良好。 2. 5 精密度试验
取同一混合对照品溶液 ( 次黄 20 、 嘌呤、 尿苷、 腺嘌呤、 鸟苷、 腺苷的浓度分别为 4 、
4、 5、 4 μg·mL ) , “ 2. 3 ” 按 项下色谱条件连续进样 6 次, 测定次黄嘌呤、 尿苷、 腺嘌呤、 鸟苷、 腺苷的峰 1. 3% 、 0. 50% 、 面 积, 计 算 RSD 分 别 为 0. 59% 、 2. 5% 、 0. 49% , 表明仪器精密度良好。 2. 6 取 1 号熟地黄样品, 按“2. 2 ” 项 下方法平行制备供试品溶液 6 份, 按上述色谱条件 重复性试验 测定峰面积, 计算次黄嘌呤、 尿苷、 腺嘌呤、 鸟苷、 腺 198. 3 、 39. 60 、 苷 含 量 的 平 均 值 分 别 为 22. 24 、 25. 96 、 77. 12 μg · g - 1 , RSD 分别为 0. 36% 、 2. 6% 、 3. 7% 、 2. 2% 、 1. 5% , 表明该方法重复性良好。
序号( No. ) 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
熟地黄中 5 个核苷类成分的含量测定结果( μg·g
, n = 3)
Results of the quantification of five components in Radix Rehmanniae Preparata
次黄嘌呤( hypoxanthine) 22. 24 58. 81 47. 70 127. 3 126. 1 27. 92 61. 87 120. 5 117. 3 97. 35 尿苷( uridine) 198. 3 274. 5 158. 4 292. 3 313. 6 242. 7 251. 0 274. 5 282. 4 308. 1 腺嘌呤( adenine) 39. 60 18. 58 11. 16 24. 46 45. 79 12. 87 37. 34 18. 58 30. 40 22. 74 鸟苷( guanosine) 25. 96 22. 21 17. 73 15. 32 30. 95 22. 21 29. 80 16. 46 18. 87 13. 13 腺苷( adenosine) 77. 12 95. 58 84. 70 66. 08 120. 8 96. 58 85. 66 108. 4 84. 23 66. 79
来源( source) 上海( Shanghai) 北京( Beijing) 南京( Nanjing) 河南( Henan) 太原( Taiyuan) 沈阳( Shenyang) 吉林( Jilin) 内蒙古( Inner Mongolia) an) 西安( Xi’ 济南( Jinan)
讨论 有文献报道通过水提醇沉工艺来考察药材中
[13 ] 核苷类成分的含量 , 此方法操作烦琐, 步骤多, 容 易产生误差。目前文献中多采用超声提取法及回流
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提取法, 本文考察了这 2 种方法, 二者无明显差异, , 因超声提取法处理简单 重复性好, 故采取超声提取 法。通过考察, 用 10% 甲醇溶液超声处理 1 h, 提取 容易操作, 误差小, 更 效果为最佳。 此法步骤简单, 能真实地反映出熟地黄药材中核苷类成分的含量 。 3. 2 本试验考察了乙腈 - 水、 甲醇 - 水、 乙腈 - 0. 1% 甲酸水溶液、 乙腈 - 醋酸铵水溶液和乙腈 - 磷 酸二氢钾水溶液等流动相系统, 结果显示以乙腈和 磷酸二氢钾水溶液为流动相时分离度及峰形能够达 -1 到较好效果, 因此采用乙腈 - 0. 04 mol · L 磷酸二 氢钾水溶液为流动相梯度洗脱。 3. 3 本文中理论上应采用二极管阵列检测器对对 照品的峰纯度做进一步的验证, 但由于对照品主峰 的柱效、 理论塔板数等均符合纯度要求, 便认为其符 合对照品纯度要求。 3. 4 本文中 10 批样品测定结果显示, 市售熟地黄 中核苷类成分含量差异较大, 可能与其炮制加工方 法有关。张丽萍考察到不同的炮制方法对地黄中还 原糖的含量有一定的影响
ZHANG Liu - ji ( 张留记) , TU Wan - qian ( 屠万倩) , YANG Ran ( 杨冉) , et al. Determination of rehmannioside D in Radix Rehmanniae from various habitats ( 不 同 产 地 地 黄 中 地 黄 苷 D 的 测 2008 , 27 ( 3 ) : 56 定) . Chin J Anal Lab( 分析实验室) ,
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。 刘明考察了地黄在
ZHOU Jun( 周军) , LI Xiao - ye( 李晓 QIN Xiang - yang( 秦向阳) , et al. RP - HPLC determination of 5 - hydroxy - methylfurfural 晔) , in prepared Rehmannia root( RP - HPLC 法测定熟地黄中 5 - 羟甲 基糠醛的含量) . J Fourth Mil Med Univ ( 第四军医 大 学学报) , 2006 , 27 ( 6 ) : 510
[14 ] 九蒸九晒炮制过程中益母草苷的含量动态变化 。 综合文献结论及实验结果得出, 加强药材炮制加工
管理对药材质量控制至关重要。 3. 5 本文建立了测定熟地黄中次黄嘌呤、 尿苷、 腺 嘌呤、 鸟苷及腺苷 5 个核苷类成分含量的高效液相 色谱法。方法操作简便、 准确, 灵敏度高, 重复性好, 可用于同时测定熟地黄中的多个核苷类成分 。
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