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多肽分子量怎么计算
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求助 新买的透析袋处理方法的选择
新买的透析袋怎么处理 网上搜索过 无非是三种方法
透析袋前处理方法：
1、 把透析袋剪成适当长度（10-20cm）的小段。
2、 在大体积（500mL）的2%（W/V）的碳酸氢钠和1mmol/L EDTA.2Na (pH=8.0)中将透析袋煮沸10min。
3、 用蒸馏水彻底清洗透析袋。
4、 放在500mL的1 mmol/L EDTA.2Na (pH=8.0)中将之煮沸10min。
5、 冷却后，置于30％或者50%的酒精中，放于4℃冰箱，必须确保透析袋始终浸没在溶液内。从此时起取用透析袋必须戴手套。
6、 在使用前要用蒸馏水将透析袋里外加以清洗干净。
透析液的配置：10g NaHCO3 + 186.6mg EDTA.2Na + 500mL蒸馏水
1 mmol/L EDTA.2Na：即373.2mg/L
可用沸水煮5至10分钟，再用蒸馏水洗净，即可使用。
可先用50％乙醇煮沸1小时，再依次用50％乙醇、0.01 mol/L碳酸氢钠和1 mmol/L EDTA（pH=8.0）溶液洗涤，最后用蒸馏水冲洗即可使用。
EDTA煮主要是为了除去生产时附着在透析袋上的金属离子。
透析袋的截留分子量3000kd。
使用后的透析袋保存方法：
1.用生理盐水浸泡以去掉蛋白，并用蒸馏水清洗干净，然后置于50％乙醇中保存即可；
2.用完以后,要彻底洗干净,透析袋也可以保存在0.1%叠氮钠（可防止微生物生长）里；0.05%-0.1%叠氮钠，或者1mM EDTA，或者50％甘油中4度保存，公司的人建议前两种保存比较好！
3.使用后的透析袋洗净后可存于4℃蒸馏水或者30%乙醇中，确保透析袋始终浸没在溶液内。若长时间不用，可加少量NaN2，以防长菌。从此时起取用透析袋必须戴手套。洗净凉干的透析袋弯折时易裂口，用时必须仔细检查，不漏时方可重复使用。
透析膜前处理方法：
1. 戴手套把透析膜剪成适当长度，浸在蒸馏水中 15 min 泡软。
2. 浸入 10 mM sodium bicarbonate 中，并加热至 80℃，同时不断搅拌至少 30 min。
3. 换到 10 mM EDTA.2Na 中浸泡 30 min，以新鲜的 EDTA 同样方法处理三次。
4. 再用 80℃蒸馏水洗 30 min，然后换到 20% 酒精中，放在 4℃冰箱中保存。
请问具体哪种方法好啊 主要是新买的 不知道怎么处理谢谢大家！
这些处理方法都比较老了。现在购买的透析袋一般都可以直接使用，特别是像一些大牌厂家的，比如spectrum。你可以看一看随货发来的说明书，一般都会有使用方法的。前不久我买了个spectrum的透析袋，说明书上就说可以直接使用，不需预处理。 这个就是spectrum的一种透析袋的使用说明：
生物技术CE膜（纤维素酯膜）透析袋，即用型，使用前不需预处理；重金属离子和硫化物含量为痕迹水平，0.05%叠氮钠防腐储存液，蒸馏水冲洗后使用；生物技术CE膜只能承受中性环境、弱酸、弱碱或温和醇类物质，接触强极性有机溶剂会损害CE膜；生物技术CE膜只能适用pH值2-9以及温度4-37 °C之间。
可见，只要用蒸馏水冲洗即可使用。 上海绿鸟？好像从这个公司买过透析袋呢——这家是做进口代理的。其实最简单的办法是你打电话问一下这个公司的销售人员，请他们看一下说明书上是怎么处理的，就OK了。我估计如果是进口的话，现在一般都不用怎么处理了，用蒸馏水冲洗一下就可以了。 我用的是方法一，但是最后一步没有泡到乙醇里，用EDTA（1mM）煮沸10 min后冷却至室温，就可以放到4°保存了！:cool: 用EDTA（1mM）煮沸一定 min 提纯，是必须的~~ 我是按照方法一改进：1、2、3、4这四个步骤不变，处理完后直接就浸泡在EDTA-Na溶液里面了，4℃存放即可，使用之前，用蒸馏水冲洗就ok了。
实验室也有人直接用EDTA-Na溶液煮沸10min，蒸馏水冲洗，就直接用了，貌似也没问题。 我前几天做分离纯化的时候也处理过，主要是新的，需要处理一下，是按照方法一处理的，只要按步骤来就好，有点麻烦 偶是将透析袋放在碱性的EDTA溶液中（碳酸钠10/L,EDTA 1mol/L)煮沸30min。呵呵…… 不好意思！上面EDTA的浓度是1mmol/L : Originally posted by 悦迷008 at
不好意思！上面EDTA的浓度是1mmol/L 恩&&知道&&呵呵 谢谢 有用，
谢谢啦 我是按方法一做的，但是处理好以后，在透析的过程中透析袋没有发生溶胀现象？里面的药物也透析不出来，为什么呢？ : Originally posted by 晓东490721 at
我是按方法一做的，但是处理好以后，在透析的过程中透析袋没有发生溶胀现象？里面的药物也透析不出来，为什么呢？ 系透析袋时要把空气挤出来的 我是装满水后，在将水倒掉，装药，里面有那摩多空气吗？难道用干透析袋吗？如何处理 现在都有即用型的透析袋了，楼主可以上网查下 我今天用大体积的2%(W/V)碳酸氢钠和1mmol/L EDTA（PH 8.0）中将透析袋煮沸10分钟后发现PH变为强碱性了
请问透析膜不是不能承受强碱么 这样透析袋还行么? 买回来的新的，剪成小的，然后用去离子水煮沸，倒掉水，再用去离子水煮，如此三次就可以用了，最后保存在20%乙醇里。透析袋的选择和使用方法_百度文库
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透析袋的选择和使用方法
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【求助】蛋白分子量80KD-300KD，该选哪种规格的透析袋啊？
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这个帖子发布于3年零81天前，其中的信息可能已发生改变或有所发展。
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请大家帮帮忙，我最近想把蛋白里的盐份去掉，选择透析袋，但不知道哪种规格合适。我的蛋白主要成分是胶原，分子量80KD-300KD，想去掉里面的氯化钠和尿素。另外，透析液选择什么呢？恳请给予指点
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选孔径在40000以下的透析袋。最终透析液用的就是你蛋白最终希望存在的溶剂体系，如果蛋白透析过程中不稳定可以分梯度透析。
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请问有用氯仿和DMEM细胞培养基作透析液的吗？我首先用高盐同质化，再用的是2M Urea溶解抽提的蛋白，参考的文献里透析了5次左右，透析液第一次是0.5% chloroform in TBS，中间几次是TBS，最后一次是DMEM细胞培养基。您觉得这个可行不？买的透析袋可以吧？但孔径是对结构相对圆的分子，胶原蛋白是螺旋长链，会不会影响？
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fuyuehe 请问有用氯仿和DMEM细胞培养基作透析液的吗？我首先用高盐同质化，再用的是2M Urea溶解抽提的蛋白，参考的文献里透析了5次左右，透析液第一次是0.5% chloroform in TBS，中间几次是TBS，最后一次是DMEM细胞培养基。您觉得这个可行不？买的透析袋可以吧？但孔径是对结构相对圆的分子，胶原蛋白是螺旋长链，会不会影响？这个像是特别为胶原蛋白设计的透析方法，文献既然已经用过了应该没问题。透析袋口径可以，有一点注意下，第一次透析用到了氯仿，要看下透析袋材料是否可以耐受氯仿，介绍里一般会有有机溶剂耐受性说明。
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你可以选择Tris缓冲液系统或PB缓冲液系统，主要看你下步实验而定。最好选择截留分子量1-4KD之间都行但是注意的地方是你的样品有高浓度盐和脲素，你装透析袋样品的量不应该太大，否则容易涨袋。
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YOUNGROLLAND 你可以选择Tris缓冲液系统或PB缓冲液系统，主要看你下步实验而定。最好选择截留分子量1-4KD之间都行但是注意的地方是你的样品有高浓度盐和脲素，你装透析袋样品的量不应该太大，否则容易涨袋。谢谢，我已经买了10000的了。我看到很多人也说到你这点，我一般只装5-8ml
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10KD可以，至于装几ml是这样的我的经验是这样：如果你是将6M脲（或盐）透析到没有，通常体积会大出1/3。但也有个办法就是在你透析过程中，如果透析涨的比较严重，你可以用PEG20000将他浓缩一下，然后再透析但最好要将透析袋清洗干净。
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YOUNGROLLAND 10KD可以，至于装几ml是这样的我的经验是这样：如果你是将6M脲（或盐）透析到没有，通常体积会大出1/3。但也有个办法就是在你透析过程中，如果透析涨的比较严重，你可以用PEG20000将他浓缩一下，然后再透析但最好要将透析袋清洗干净。好滴，谢谢你的经验分享，我尝试下，到时候遇到问题可能还要来叨扰你哦
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