酶消化过久对细胞冻存步骤后再复苏活性有影响吗

基本培养基占80%~90%,小牛血清占10%~20%。 按1%体积分数加入双抗贮存液(青霉素+链霉素),使青霉素和链霉素的终浓度分别为100U/mL和100μg/mL。 (五)注意事项
1.培养细胞使用的瓶子和饭盒应与提取RNA和培养细菌的瓶子和饭盒严格分开。因为用于处理提取RNA的DEPC水(0.1%焦炭酸二乙酯)是一种致癌剂,并可能影响细胞生长;而培养过细菌的用品也不应与细胞混用。
2.过滤时压力不要太大,以压力数字2为宜,否则细菌易滤过达不到除菌效果,或使滤膜破裂。分装时需根据使用量的多少分装于大小合适的瓶子中(分装量为使用3~5次用完为宜,并且每瓶只能装2/3体积的液体,过多时瓶子易爆或胶塞自喷)。
3.滤器用毕立即刷洗,过蒸馏水,晾干收藏。 (六)实验报告
根据表1-2的实验安排进行实验,实验结果中填写:遇到什么问题?如何解决?实验结果怎样?
(七)思考题
1.为什么配制培养基之前要反复处理配制用水并要事先高压处理? 2.血清在细胞培养中有何作用?
3.配制培养基时调节pH值的目的是什么?
三、PBS和消化液(胰酶液)的配制
(一)实验目的
熟练掌握PBS平衡盐溶液的配制,了解消化液(胰酶液)的配制方法。 (二)实验原理
PBS液是常见的平衡盐溶液(BSS)之一。PBS与细胞生长状态下的pH值、渗透压及无菌状态一致,且配方简单,是组织培养基本用液,常用于配制培养基及其他用液,或洗细胞等,细胞在PBS中可生存几个小时。
胰蛋白酶(胰酸)溶液是一种常用的细胞消化液,原代培养时用于处理组织块,使细胞分离下来。传代时用胰蛋白酶使培养细胞离开所贴附的培养瓶表面,并分散成单个细胞。蛋白酶主要采自牛或猪的胰脏,呈白色粉末状,易潮解,应在低温干燥处保存。胰酶的活力常用一份胰酶解离酪蛋白的份数表示,常用胰酶活力为1:125或1:250。本实验室一般用1:250(GRC公司生产)。胰蛋白酶对细胞的分离效果与细胞的类型、特性和瓶壁表面特性有关。一般来说浓度大、温度高(勿高于37t)、作用时间长,则对细胞分离能力大。但超过一定程度会损伤细胞,导致细胞传代后不能贴壁或死亡。胰酶在pH 8.0、37℃时消化能力最强。溶液
中的Ca、Mg和血清会降低胰酶活力,所以配制胰酶时须用无Ca、Mg2+的D-Hanks液。当消化结束时,可加入少量血清或含血清的培养基以终止胰酶作用。
细胞传代使用的胰酶浓度是0.25%或0.2%。用于原代细胞培养消化组织块则为0.1%或0.125%。
(三)仪器、材料和试剂
抽滤泵1套,过滤器1套,高压灭菌锅,量筒,磁力搅拌器,研磨器。
3000mL锥形瓶,25mL、50mL试剂瓶,500mL输液瓶,螺口盖,翻帽塞,pH试纸,孔径0.22μm的微孔滤膜。
NaCl,Na2HPO4,KH2PO4,KCl,酚红,NaHCO3,胰蛋白酶干粉,0.02%EDTA,CaCl2,D-葡萄糖,MgCl2?6H2O,MgSO4?7H2O,酚红(2%)(配法:称酚红2g,置于研磨器中,先用数滴5.6%的NaHCO3溶液溶解并研磨,再加进该5.6%NaHCO3溶液使最终体积为100mL。瓶装保存,备用)。 (四)实验步骤 配制D-Hanks液
1.按表1-3称取D-Hanks试剂。
2.依次加入上述试剂至800mL蒸馏水中,溶解后定容至1000mL。 3.高压灭菌,10磅10min。 配制Hanks液
1.按表1-2称取Hanks试剂。
2.配制Hanks时,需将CaCl2另溶解于100mL的蒸馏水中。
3.依次加入上述试剂至700mL蒸溜水中,溶解后再与CaCl2溶液一起定容至1000mL。 4.10磅,10min高压灭菌。 配制胰蛋白酶消化液
1.D-Hanks液高压灭菌之后,晾至室温,4℃保存备用。
2.称取一定量胰蛋白酶粉末于研磨器中(夏天时研磨器应放在冰浴中),加入少量D-Hanks液研磨1000次左右,调制成糊状。再放人4℃预冷的适量D-Hanks液中,4℃下磁力搅拌使完全溶解。
3.用NaHCO3干粉将胰酶溶液的pH值调至8.0左右(胰酶作用的最适pH值),并加入0.02%EDTA以协助消化作用。
4.滤过除菌(方法见二、培养基的配制),-20℃冻存。 (五)注意事项
1.BSS的pH值应确定为7.2左右。
2.如配制的Hanks液高压灭菌后液体变混,则可将100mL的CaCl2与含有其他成分的液体分别装瓶高压灭菌之后,再在无菌条件下配制,定容。这样可以避免高压灭菌后液体变混。
3.胰酶受热易失活,所以尽量避免盛夏配制,并且在配制过程中温度应始终保持在4℃左右。
4.胰酶研磨要充分,否则在过滤时会将较大的颗粒过滤掉,不能达到真正的浓度。 5.胰酶分装时尽量分装成小瓶,并遵守3次左右用完和只装2/3体积的原则。因为冷冻
保存时体积会膨胀,而多次使用同一瓶胰酶可能增加污染的机会。尽量缩短胰酶在0℃以上停留的时间,以保持胰酶的消化能力。 (六)实验报告
根据你的实验填表1-3-1
1.D-Hanks液的主要用途是什么?
2.配制胰酶消化液时应注意哪些问题?
3.D-Hanks和Hanks液的成分和配制方法有什么主要区别? 4.如何估计是否传代和传代的方式?
四、细胞传代培养
(一)实验目的
熟练掌握细胞的传代培养法。 (二)实验原理
传代培养是组织培养常规保种方法之一。也是几乎所有细胞生物学实验的基础。当
细胞在培养瓶中长满后就需要将其稀释分种成多瓶,细胞才能继续生长。这一过程就叫传代。传代培养可获得大量细胞供实验所需。细胞对酶的消化作用反应不一,有的敏感,有的迟钝,适度掌握细胞消化时间和选择适宜的方法很关键。传代要在严格的无菌条件下进行,每一步都需要认真仔细的无菌操作。 (三)仪器、材料与试剂
CO2培养箱,倒置显微镜,超净台。
培养瓶,试管,移液管,巴斯德吸管,废液缸,75%酒精棉球,酒精灯,培养细胞。
培养基(RPMIl640或DMEM),小牛血清或胎牛血清,0.25%胰蛋白酶,Hanks液。
(四)实验步骤
1.入无菌室之前用肥皂洗手,用75%酒精擦拭消毒双手。
2.倒置显微镜下观察细胞形态,确定细胞是否需要传代及细胞需要稀释的倍数。将培养用液置37℃下预热。
3.超净台台面应整洁,用0.1%新洁尔灭溶液擦净或75%酒精棉球清洁。
4.打开超净台的紫外灯照射台面20min左右,关闭超净台的紫外灯,打开风机清洁空气,除去臭氧。
5.点燃酒精灯;取出无菌试管,巴士德吸管和刻度吸管;安上橡皮头;过酒精灯火焰略烧后插在无菌试管内。
6.将培养用液瓶口用75%酒精消毒,过酒精灯火焰后斜置于酒精灯旁的架子上。 7.倒掉培养细胞的旧培养基。酌情可用2~3mL Hanks液洗去残留的旧培养基,或用少量胰酶涮洗一下。
8.每个大培养瓶加入1mL胰酶,小瓶用量酌减,盖好瓶盖后在倒置显微镜下观察,当细胞收回突起变圆时立即翻转培养瓶,使细胞脱离胰酶,然后将胰酶倒掉。注意勿使细胞提早脱落人消化液中。
9.加入少量的含血清的新鲜培养基,反复吹打消化好的细胞使其脱壁并分散,再根据分传瓶数补加一定量的含血清的新鲜培养基(7~10mL/大瓶,3~5mL/小瓶)制成细胞悬液,然后分装到新培养瓶中。盖上瓶盖,适度拧紧后再稍回转,以利于CO2气体的进入,将培养
瓶放回CO2培养箱。
10.对悬浮培养细胞,步骤7~9不做。可将细胞悬液进行离心去除旧培养基上清,加入新鲜培养基,然后分装到各瓶中。 (五)注意事项
1.传代培养时要注意无菌操作并防止细胞之间的交叉污染。所有操作要尽量靠近酒精灯火焰。每次最好只进行一种细胞的操作。每一种细胞使用一套器材。培养用液应严格分开。
2.每天观察细胞形态,掌握好细胞是否健康的标准:健康细胞的形态饱满,折光性好,生长致密时即可传代。
3.如发现细胞有污染迹象,应立即采取措施,一般应弃置污染的细胞,如果必须挽救,可加含有抗生素的BSS或培养基反复清洗,随后培养基中加入较大量的抗菌素,并经常更换培养基等。
(六)实验报告
1.试述传代培养的步骤和注意事项,并指出哪些是关键步骤? 2.判断细胞健康的标准是什么? (七)分析
1.细胞传代培养的目的是什么?
2.贴壁细胞和悬浮细胞传代方法上有什么不同?
五、细胞冻存与复苏
(一)实验目的
掌握细胞保存的方法,能独立地进行细胞冻存与复苏操作。 (二)实验原理
细胞冻存是细胞保存的主要方法之一。利用冻存技术将细胞置于-196℃液氮中低温保存,可以使细胞暂时脱离生长状态而将其细胞特性保存起来,这样在需要的时候再复苏细胞用于实验。而且适度地保存一定量的细胞,可以防止因正在培养的细胞被污染或其他意外事件而使细胞丢种,起到了细胞保种的作用。除此之外,还可以利用细胞冻存的形式来购买、寄赠、交换和运送某些细胞。
细胞冻存时向培养基中加入保护剂――终浓度5%~15%的甘油或二甲基亚砜(DMSO),可使溶液冰点降低,加之在缓慢冻结条件下,细胞内水分透出,减少了冰晶形成,从而避免细胞损伤。
采用“慢冻快融”的方法能较好地保证细胞存活。标准冷冻速度开始为-1~-2℃/ min,当温度低于-25℃时可加速,到-80℃之后可直接投入液氮内(-196℃)。复苏细胞时则直接将装有细胞的冻存管投入40℃热水中迅速解冻。 (三)仪器、材料和试剂 仪器
4℃冰箱,-70℃冰箱,液氮容器,微量加样器,水浴锅,离心机。
冻存管,离心管,细胞培养用材料,500mL烧杯,胶布,搪瓷杯,75%酒精棉球。 试剂
培养基(RPMIl640或DMEM),小牛血清,0.25%胰蛋白酶溶液,二甲基亚砜(DMSO)或甘油,0.5%台盼蓝染液,液氮。 (四)实验步骤 细胞冻存 1.取待冻存的细胞用胰酶消化(见四、细胞传代培养部分),用培养基将细胞冲洗下来。800r/min离心5min,弃上清收集细胞。如果是悬浮生长的细胞,则可直接离心收集细胞。
2.加入适量冻存液(10%甘油+90%培养基,或者10%DMSO+90%培养基)制成细胞悬液。细胞浓度宜大,3×106个/mL左右,并可适量增加小牛血清浓度至20%。
3.细胞悬液装入冻存管中。用胶布封裹,做好标记(写上细胞种类、时间及冻存条件等)。
4.冻存管在4℃下存放30min,转放-20℃ 1.5~2h,再转入-70℃ 4~12h后即可转移到液氮内(-196℃),注意进行登记。
1.取一搪瓷杯盛上适量自来水加热至40℃左右。 2.从液氮中取出冻存管立即投人40℃水中迅速解冻。 3.取出冻存管,用75%酒精清洁管口,打开。您好,欢迎来到!
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关于细胞的冻存与复苏的心得
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&一、 实验目的掌握细胞保存的方法,能独立地进行细胞的冻存与复苏操作。二、实验原理细胞冻存是细胞保存的主要方法之一。利用冻存技术将细胞置于-196℃液氮中低温保存,可以使细胞暂时脱离生长状态而将其细胞特性保存起来,这样在需要的时候再复苏细胞用于实验。而且适度地保存一定量的细胞,可以防止因正在培养的细胞被污染或其他意外事件而使细胞丢种,起到保种的作用。此外,还可以利用细胞冻存的形式购买、寄赠、交换和运送某些细胞。细胞冻存时向培养基中加入保护剂&&终浓度5%-15% 的甘油或二甲基亚砜(DMSO),可使溶液冰点降低,加之在缓慢冻结条件下,在细胞内水分透出,减少了冰晶形成,从而避免细胞损伤。采用&慢冻快融&的方法能较好的保证细胞的存活。标准冷冻速度为-1~-2℃/min,当温度低于-25℃时加速,到-80℃之后直接投入液氮内(-196℃)。复苏细胞时则直接将装有细胞的冻存管投入40℃热水中迅速解冻。三、、试剂和材料:4℃冰箱、-70℃冰箱、液氮容器、微量加样器、水浴锅、离心机。材料:冻存管、细胞培养用材料、500ml烧杯、胶布、搪瓷杯、75%酒精棉球。试剂:培养基RPMI1640、小牛血清、0.25%胰蛋白酶溶液、二甲基亚砜(DMSO)或甘油、0.5%台盼篮染液、液氮。四、实验步骤(一)细胞冻存1、取待冻存的细胞用胰酶消化,用培养基将细胞冲洗下来。800r/min离心5min,弃上清收集细胞。如果是悬浮培养的细胞,可直接离心收集细胞。2、加入适量冻存液(10%甘油+90%培养基,或是10%DMSO+90%培养基)制成细胞悬液。细胞浓度宜大,3*106个/ml左右,并可适量增加小牛血清浓度至20%。3、细胞悬液装入冻存管中。用胶布封裹,做好标记(注明细胞种类、时间、条件等)。4、冻存管在4℃下存放30min,转放-20℃1.5h~2h,再转入-70℃4~12h后即可转入液氮内(-196℃),注意进行登记。(二)细胞复苏1、取一搪瓷杯盛上适量自来水加热至40℃左右。2、从液氮中取出冻存管立即投入40℃水中迅速解冻。3、取出冻存管,用75%酒精清洁管口,打开。4、离心去上清收集细胞,用无血清培养基洗1次,加入3ml新鲜培养基,于小培养瓶中培养。5、每日观察细胞生长情况,如果死细胞较多,复苏次日应换液。待细胞长满后进行传代培养。五、注意事项1、在使用含有DMSO的冻存液时,因为DMSO在室温状态易损伤细胞,所以在细胞加入冻存液后应尽快放入4℃环境中。2、准确记录细胞的种类、冻存时间、冻存液的品种和冻存者信息。小结:这里总结了细胞的冻存复苏操作技术,希望对大家有用。如有需要可以与我们联系。
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